ไรแดง & เพลี้ยไฟ: การระบุชนิด วงจรชีวิต และการควบคุมโดยชีววิธีสำหรับกัญชา
ศัตรูพืชประเภทปากดูดที่พบได้บ่อยที่สุดสองชนิดในการปลูกกัญชา — และอาวุธทางชีวภาพที่จะช่วยกำจัดพวกมันได้โดยไม่ต้องใช้สารเคมี
1. รู้จักศัตรูของคุณ: ทำไมศัตรูพืชสองชนิดนี้ถึงครองพื้นที่
หากคุณปลูกกัญชาในร่ม ในที่สุดคุณจะต้องเผชิญหน้ากับไรแดง เพลี้ยไฟ หรือทั้งสองอย่าง นี่ไม่ใช่เรื่องของโชคร้ายที่เกิดขึ้นลอยๆ — แต่อุณหภูมิที่อบอุ่น ความแห้ง และสภาพแวดล้อมที่อุดมไปด้วยธาตุอาหารในห้องปลูก คือสิ่งที่ศัตรูพืชเหล่านี้วิวัฒนาการมาเพื่อเก็บเกี่ยวผลประโยชน์โดยเฉพาะ การเข้าใจชีววิทยาของพวกมันคือขั้นตอนแรกในการควบคุม
ส่วน A: ไรแดง (Tetranychus urticae)
2. การระบุชนิด
ไรแดงสองจุด (Tetranychus urticae) เป็นศัตรูพืชกลุ่มสัตว์ขาปล้องที่สร้างความเสียหายมากที่สุดให้กับการปลูกกัญชาในร่มทั่วโลก แม้จะมีชื่อเรียกเกี่ยวข้องกับแมงมุม แต่ไรแดงจัดเป็นสัตว์กลุ่มแมง (arachnids) ไม่ใช่แมลง — มี 8 ขา ไม่ใช่ 6 ขา
สิ่งที่คุณจะสังเกตเห็น:
| สัญญาณเตือน | ระยะของการระบาด |
|---|---|
| จุดสีขาว/เหลืองขนาดเล็ก (stippling) บนผิวใบด้านบน | ระยะแรก — ไรแดงกำลังดูดกินน้ำเลี้ยงอยู่ใต้ใบ |
| ใบเริ่มมีลักษณะคล้ายมีฝุ่นผงบางๆ เกาะ | ระยะแรกถึงปานกลาง |
| จุดขนาดเล็กที่เคลื่อนไหวได้ (0.3–0.5 มม.) ใต้ใบ มองเห็นได้ชัดด้วยกล้องขยาย 30 เท่า | ระยะกำลังดูดกินน้ำเลี้ยงอย่างหนัก |
| ใยแมงมุมเส้นละเอียดระหว่างใบและบริเวณปลายกิ่ง | ระยะลุกลาม — ประชากรไรแดงมีจำนวนมาก |
| ใบเริ่มเหลือง ม้วนงอ และร่วง | ระยะรุนแรง — ต้นพืชเริ่มพ่ายแพ้ |
| ใยหนาแน่นปกคลุมทั่วช่อดอกและยอด | ระยะวิกฤต — สูญเสียผลผลิตเกือบทั้งหมดหากไม่ได้รับการรักษา |
| — | — |
สัญญาณแรกเริ่มที่สำคัญคือ รอยจุดด่าง (stippling) — จุดสีซีดบนผิวใบด้านบน มักหนาแน่นตามเส้นกลางใบและเส้นใบ ซึ่งสามารถมองเห็นได้ด้วยตาเปล่าก่อนที่จะเห็นตัวไรแดงเสียอีก หากคุณเห็นรอยจุดด่าง ให้พลิกใบและส่องดูใต้ใบด้วยกล้องขยาย 30 เท่า จะพบไรแดงปรากฏเป็นจุดเล็กๆ ที่เคลื่อนไหวได้ มักรวมกลุ่มอยู่ใกล้เส้นใบ
3. วงจรชีวิต: ทำไมพวกมันถึงเพิ่มจำนวนได้อย่างรวดเร็ว
วงจรชีวิตประกอบด้วย ระยะไข่, ตัวอ่อนวัยแรก (larva), ระยะตัวอ่อนสองวัย (protonymph และ deutonymph) และตัวเต็มวัย [2]
| ระยะ | บันทึกเพิ่มเติม |
|---|---|
| ไข่ | กลม ใส อยู่ใต้ใบ |
| ตัวอ่อนวัยแรก (Larva) | มี 6 ขา |
| Protonymph | มี 8 ขา |
| Deutonymph | มี 8 ขา |
| ตัวเมียเต็มวัย | มีชีวิตอยู่ได้ 2–4 สัปดาห์ [2] |
| ระยะไข่ถึงตัวเต็มวัย | 5–20 วัน ที่อุณหภูมิประมาณ 27 °C (80 °F) [2] |
ตัวเมียหนึ่งตัวสามารถวางไข่ได้ หลายร้อยฟอง ตลอดช่วงชีวิต [2] เมื่อรวมกับระยะเวลาการเจริญเติบโตที่อาจน้อยกว่าหนึ่งสัปดาห์ในห้องปลูกที่ร้อน นี่จึงเป็นปัญหาทั้งหมด: เมื่อถึงเวลาที่คุณเห็นใยแมงมุม ประชากรของพวกมันก็ได้สะสมและเติบโตมานานหลายสัปดาห์แล้ว
การพึ่งพาอุณหภูมิ ไรแดงจะเจริญเติบโตได้ดีที่สุดในสภาพอากาศร้อนและแห้ง สภาพอากาศที่เย็นและมีความชื้นจะช่วยชะลอการเจริญเติบโตของพวกมัน — ซึ่งเป็นหนึ่งในปัจจัยทางสภาพแวดล้อมไม่กี่อย่างที่คุณสามารถควบคุมได้โดยตรง
การพักตัว (Diapause) เมื่อความยาวของวันสั้นลงหรืออุณหภูมิลดลง ตัวเมียสามารถเข้าสู่ภาวะพักตัวได้: พวกมันจะหยุดกินอาหารและหยุดสืบพันธุ์ เปลี่ยนสีเป็น สีส้มถึงแดงส้ม และซ่อนตัวตามเศษซากพืช รอยแตก หรือโครงสร้างของห้องปลูก [2] พวกมันจะกลับออกมาอีกครั้งเมื่อสภาพแวดล้อมเหมาะสมขึ้น นี่คือเหตุผลที่การทำความสะอาดห้องปลูกระหว่างรอบปลูกจึงเป็นสิ่งที่มองข้ามไม่ได้
4. การดื้อสารกำจัดศัตรูพืช: สงครามที่สารเคมีไม่มีวันชนะ
นี่ไม่ใช่แค่ความคิดเห็น Tetranychus urticae ถือครองสิ่งที่รายงานการวิจารณ์มาตรฐานเรียกว่า “ชื่อเสียงอันน่ากังขาในการเป็น ‘สปีชีส์ที่ดื้อยาที่สุด’ ในแง่ของจำนวนรวมของสารกำจัดศัตรูพืชที่ประชากรของมันสร้างการดื้อยาขึ้นมา” [1] รายงานระบุว่าเกิดจากลักษณะทางชีววิทยา 3 ประการ: วงจรชีวิตที่สั้น, จำนวนลูกหลานที่มหาศาล และการสืบพันธุ์แบบกำเนิดจากไข่ไม่ปฏิสนธิ (arrhenotokous reproduction) — โดยตัวผู้จะพัฒนามาจากไข่ที่ไม่ได้ผสม ดังนั้นยีนดื้อยาจึงแสดงออกทันทีแทนที่จะซ่อนอยู่ในยีนเฮเทอโรไซกัส [1]
การดื้อยาที่ได้รับการบันทึกไว้ในประชากรไรแดงตามโรงเรือนและแปลงปลูกครอบคลุมถึงสารเคมีกลุ่มต่างๆ เช่น:
- สารกลุ่มไพรีทรอยด์ (bifenthrin, permethrin)
- สารกลุ่มออร์กาโนฟอสเฟต
- Abamectin (Avid)
- Spiromesifen (Oberon)
- Etoxazole (TetraSan)
กลยุทธ์การใช้สารเคมีเพียงอย่างเดียวในการปลูกกัญชาเป็นเกมที่แพ้ตั้งแต่เริ่มต้น — ไม่ใช่เพราะสารเคมีไม่เคยได้ผล แต่เป็นเพราะศัตรูพืชสปีชีส์นี้เป็นสัตว์ขาปล้องที่มีความสามารถในการปรับตัวเหนือกว่าสารเคมีดีที่สุด การควบคุมโดยชีววิธีจึงไม่ใช่แค่ทางเลือกแบบออร์แกนิกที่น่ารัก แต่เป็นกลยุทธ์ที่ไม่มีวันหมดอายุ
5. การควบคุมโดยชีววิธี: ไรตัวห้ำ (Predatory Mites)
การควบคุมโดยชีววิธีอาศัยการปลดปล่อยไรตัวห้ำที่กินไรแดงเป็นอาหาร ควรอ่านข้อจำกัดด้านอุณหภูมิและความชื้นก่อนเลือกใช้ — ปัจจัยเหล่านี้คือเหตุผลที่ทำให้การปล่อยแมลงศัตรูธรรมชาติล้มเหลวในห้องหนึ่ง แต่ได้ผลดีในอีกห้องหนึ่ง
| ตัวห้ำ | ช่วงอุณหภูมิที่ได้ผล (ข้อมูลจากผู้ผลิต) | รอดชีวิตได้ไหมหากไม่มีไรแดง? |
|---|---|---|
| Phytoseiulus persimilis | 13–27 °C; ไม่ได้ผลที่อุณหภูมิสูงกว่า 30 °C อ่อนไหวต่อ RH ที่ต่ำกว่า 70% | ไม่รอด — ประชากรจะลดลงอย่างรวดเร็วและกินกันเองเมื่อไม่มีเหยื่อ [7] |
| Neoseiulus californicus (ชื่อเดิม Amblyseius) | 13–32 °C อ่อนไหวต่อ RH ที่ต่ำกว่า 60% | รอด — สามารถกินไรชนิดอื่น เพลี้ยไฟ และเกสรดอกไม้เป็นอาหารได้; รอดชีวิตได้นานกว่า P. persimilis แม้ไม่มีอาหาร [7] |
| Amblyseius andersoni | ได้ผล สูงกว่า 14 °C, เหมาะสมที่สุดที่ 20–28 °C อ่อนไหวต่อ RH ที่ต่ำกว่า 65% | รอด — กินเกสรดอกไม้เป็นอาหาร ตั้งรกรากได้ก่อนที่ศัตรูพืชจะมาถึง [7] |
อัตราการกินเหยื่อ ที่อุณหภูมิประมาณ 20 °C ร่วมกับปริมาณเหยื่อที่เพียงพอ ตัวเมียเต็มวัยของ P. persimilis สามารถกิน ไรแดงตัวเต็มวัยได้สูงสุด 5 ตัว หรือกินตัวอ่อนวัยแรกและไข่ได้ถึง 20 ฟองต่อวัน และเจริญเติบโตได้เร็วกว่าไรแดงประมาณสองเท่า [7] ความเร็วนี้เองที่ทำให้มันสามารถกำจัดไรแดงที่กำลังระบาดได้อย่างรวดเร็ว — และเป็นเหตุผลว่าทำไมมันถึงหายไปเมื่อการระบาดหมดลง
ข้อควรระวังสำคัญสองประการที่มีความสำคัญมากกว่าอัตราการปล่อย:
- P. persimilis จะหยุดทำงานที่อุณหภูมิสูงกว่า 30 °C [7] ห้องปลูกหลายแห่งในประเทศไทยมีอุณหภูมิสูงกว่านั้นในระดับทรงพุ่มช่วงเปิดไฟ หากห้องของคุณเป็นเช่นนั้น ตัวห้ำชนิดนี้จะไม่ใช่เครื่องมือที่ถูกต้องไม่ว่าจะดูดีแค่ไหนในการทดสอบจากฝั่งยุโรปก็ตาม
- A. andersoni ถูกระบุไว้สำหรับไรแดงประเภทที่ไม่สร้างใย เช่น ไรแดงยุโรป (Panonychus ulmi) รวมถึงตัวอ่อนเพลี้ยไฟ แมลงหวี่ขาว และไรสนิม [7] — มันเป็นตัวห้ำทั่วไปสำหรับคุมพื้นที่ ไม่ใช่ตัวห้ำเฉพาะทางที่จะกำจัดไรแดง T. urticae ที่กำลังระบาดหนัก
กลยุทธ์ที่สรุปได้จากข้อจำกัดเหล่านี้:
- การป้องกัน: ใช้ตัวห้ำแบบทั่วไปที่รอดชีวิตได้โดยไม่ต้องมีเหยื่อ — เช่น N. californicus หรือ A. andersoni ในห้องที่อบอุ่น — โดยปล่อยตั้งแต่เริ่มต้นรอบปลูก เพื่อให้มีประชากรตัวห้ำเตรียมพร้อมอยู่แล้วเมื่อศัตรูพืชมาถึง
- การรักษา: ใช้ P. persimilis เมื่อตรวจพบการระบาด หากอุณหภูมิในห้องต่ำกว่า 30 °C และมีความชื้น RH สูงกว่า 70% หากไม่เข้าเงื่อนไข ให้กลับไปใช้ไรตัวห้ำทั่วไปร่วมกับมาตรการทางกายภาพและสารสกัดธรรมชาติในข้อ 6
- รักษาสภาพแวดล้อมที่เอื้อต่อตัวห้ำ ไม่ใช่ศัตรูพืช ปฏิบัติตามอัตราการปล่อยของผู้ผลิตตามขนาดพืชและปริมาตรห้องปลูกของคุณ อัตราจะแตกต่างกันไปตามรูปแบบผลิตภัณฑ์และความกดดันของศัตรูพืช และอัตราที่คัดลอกมาจากบทความจะมีค่าน้อยกว่าอัตราที่ระบุไว้บนซองบรรจุภัณฑ์
6. การจัดการไรแดงโดยไม่ใช้สารชีวภาพ
การกำจัดทางกายภาพ การใช้น้ำแรงดันสูงฉีดใต้ใบจะช่วยน็อคตัวเต็มวัยและไข่ให้หลุดออก ทำซ้ำทุกๆ 3 วัน เป็นเวลา 2 สัปดาห์ เพื่อตัดวงจรชีวิต
การสเปรย์ด้วยสารสกัดทางชีวภาพและสารที่มีความเป็นพิษต่ำ
- น้ำมันสะเดา (neem oil) (สกัดเย็น): 5 มล./ลิตร ผสมสบู่เหลว 2 มล./ลิตร เพื่อเป็นสารประสาน ฉีดพ่นช่วงปิดไฟ ช่วยขัดขวางการกินอาหารและการสืบพันธุ์ ห้ามใช้หลังจากช่วงสัปดาห์ที่ 3 ของระยะออกดอก เนื่องจากส่งผลต่อรสชาติและกลิ่น
- สบู่ออกฤทธิ์กำจัดแมลง (Insecticidal soap) (เกลือโพแทสเซียมของกรดไขมัน): ออกฤทธิ์น็อคเมื่อสัมผัสตัว ไม่มีสารตกค้าง สามารถใช้ในระยะหลังของรอบปลูกได้
- การสเปรย์ด้วยกำมะถัน: มีประสิทธิภาพสูง แต่ ห้ามใช้ภายใน 2 สัปดาห์ก่อนหรือหลังการสเปรย์ด้วยน้ำมันทุกชนิด — การใช้ร่วมกันจะทำให้ใบไหม้
การปรับเปลี่ยนสภาพแวดล้อม การเพิ่มความชื้นและหลีกเลี่ยงไม่ให้ทรงพุ่มร้อนและแห้งจะช่วยยับยั้งการสืบพันธุ์ แต่ข้อเสียคือ สภาพอากาศชื้นเช่นนี้อาจเอื้อต่อการเกิดโรคเน่าช่อดอก / โบไทรทิส และราแป้ง ในช่วงดอก ดังนั้นการปรับปัจจัยนี้จึงทำได้ง่ายในระยะทางใบ แต่มียอดความเสี่ยงสูงในช่วงดอกสมบูรณ์
ส่วน B: เพลี้ยไฟ (Frankliniella occidentalis และชนิดอื่นๆ)
7. การระบุชนิด
เพลี้ยไฟเป็นแมลงขนาดเล็กมาก (1–2 มม.) ลำตัวยาวเรียว ออกฤทธิ์ดูดและขูดเนื้อเยื่อเซลล์ สปีชีส์ที่พบได้บ่อยที่สุดในกัญชาคือ เพลี้ยไฟตะวันตก (Frankliniella occidentalis) ซึ่งเป็นศัตรูพืชระดับโลกในโรงเรือน
| สัญญาณเตือน | รายละเอียด |
|---|---|
| รอยเส้นหรือแผลแถบสีเงิน/สีทองบรอนซ์บนใบ | เกิดจากเซลล์พืชที่สูญเสียน้ำเลี้ยงและสะท้อนแสง |
| จุดสีดำขนาดเล็กบนใบ | มูลของเพลี้ยไฟ |
| แมลงตัวเล็กเรียวยาวบนใบและตามกลุ่มช่อดอก | ตัวเต็มวัยยาว 1–1.5 มม. สีเหลืองซีดถึงน้ำตาล เคลื่อนไหวรวดเร็ว |
| ยอดใหม่ม้วนงอหรือบิดเบี้ยว | เกิดจากการถูกดูดกินน้ำเลี้ยงอย่างหนักในเนื้อเยื่ออ่อน |
| รอยแผลเป็นสีเข้มบนช่อดอก | ความเสียหายจากการดูดกินในช่อดอก — จัดเป็นตำหนิด้านคุณภาพ |
| — | — |
ไม่เหมือนกับไรแดง เพลี้ยไฟเป็นแมลงที่ เคลื่อนไหวได้สูง — พวกมันสามารถบิน กระโดด และแพร่กระจายไปทั่วห้องปลูกได้ภายในไม่กี่วัน
8. วงจรชีวิต — และมายาคติเรื่องการเข้าดักแด้
| ระยะ | ตำแหน่งที่พบ |
|---|---|
| ไข่ | ถูกฝังอยู่ ภายใน เนื้อเยื่อใบ |
| ตัวอ่อนวัยที่ 1 และ 2 | ดำรงชีวิตดูดกินน้ำเลี้ยง บนผิวใบ |
| ระยะก่อนดักแด้และดักแด้ | หยุดกินอาหาร — ดูรายละเอียดด้านล่าง |
| ตัวเต็มวัย | ดูดกินอาหารและสืบพันธุ์ บนใบและช่อดอก |
คำแนะนำทั่วไปมักบอกว่า ระยะก่อนดักแด้และระยะดักแด้จะอาศัยอยู่ในวัสดุปลูก ดังนั้นการจัดการดินจึงตัดวงจรชีวิตได้ ซึ่งนั่น ถูกต้องเพียงครึ่งเดียว และครึ่งที่ผิดพลาดนั้นทำให้คุณสูญเสียเงิน ข้อมูลจาก UC IPM ระบุว่า ระยะก่อนดักแด้และดักแด้จะเกิดขึ้นในวัสดุปลูกหรือดินใต้ต้นพืชที่ติดเชื้อ ขณะที่ข้อมูลส่งเสริมการเกษตรของ Kansas State ให้รายละเอียดที่เฉพาะเจาะจงกว่าว่า: เพลี้ยไฟตะวันตก “เข้าดักแด้ตามเศษซากใบ บนตัวต้นพืช และในดอกที่บานของพืชบางชนิด” แม้ว่าทั้งสองระยะจะ พบได้บ่อย ในวัสดุปลูกหรือดินใต้โต๊ะปลูกก็ตาม [3][4]
ผลลัพธ์คือ: ชีววุธที่ใส่ลงในดินไม่สามารถเข้าถึงดักแด้ที่อยู่บนต้นพืชได้ และเอกสารฉบับเดียวกันของ Kansas State ก็เตือนว่า สารควบคุมที่มุ่งเป้าไปที่ระยะที่อยู่อาศัยในดิน “อาจไม่ให้การควบคุมหรือยับยั้งที่เพียงพอ (อ้างอิงจากเปอร์เซ็นต์การตาย) ของระยะชีวิตที่อยู่อาศัยในดิน (ดักแด้) เพื่อส่งผลกระทบอย่างมีนัยสำคัญต่อประชากรเพลี้ยไฟตะวันตก” [3] จงจัดการดินให้เป็นเพียงชั้นหนึ่งในหลายๆ ชั้นของการป้องกัน ไม่ใช่ขั้นตอนเดียวที่จบกระบวนการ
9. เพลี้ยไฟและไวรัส — สิ่งที่มีการบันทึกไว้อย่างแท้จริงในกัญชา
เพลี้ยไฟเป็นพาหะนำโรคไวรัสกลุ่ม Tospovirus เช่น ไวรัสโรคเหี่ยวแห้งจุดส้มในมะเขือเทศ (TSWV) ในพืชหลายชนิด และสิ่งนี้มักถูกนำมาอ้างอิงในงานเขียนเกี่ยวกับกัญชาว่าเป็นภัยคุกคามหลัก แต่หากนำมาใช้กับกัญชา ข้อกล่าวอ้างนั้นยังไม่ได้รับการสนับสนุนจากงานสำรวจในปัจจุบัน
การสำรวจไวรัสและไวรอยด์ในกัญชงเป็นวงกว้างครั้งแรก — ตรวจพบไวรัส 7 ชนิดและไวรอยด์ 1 ชนิดทั่วรัฐโคโลราโด — ไม่พบ TSWV หรือไวรัสกลุ่ม Tospovirus ใดๆ แต่สิ่งที่พบในอัตราที่สูงมากคือ Beet curly top virus ซึ่งพบใน 81% ของตัวอย่าง (109 จาก 134 ตัวอย่าง) พร้อมกับ Hop latent viroid และอื่นๆ [6] ซึ่ง BCTV มีพาหะนำโรคคือเพลี้ยกระโดดสีบีท ไม่ใช่เพลี้ยไฟ
ดังนั้น: กำจัดเพลี้ยไฟเพราะพวกมันทำลายพืชโดยตรงจากการดูดกินและสร้างรอยแผลเป็นบนช่อดอก — ซึ่งเป็นปัญหาต่อคุณภาพและการจัดเกรดดอกกัญชาที่เกิดขึ้นจริง — ไม่ใช่เพราะความเสี่ยงด้านไวรัสในกัญชาที่ยังไม่มีการพิสูจน์ หากผู้ขายหรือบทความใดบอกคุณเป็นอย่างอื่น ให้ถามว่ามาจากผลการศึกษาในกัญชาฉบับใด
10. การควบคุมโดยชีววิธี: ตัวห้ำสำหรับเพลี้ยไฟ
บนต้นพืช (ตัวอ่อน):
| ตัวห้ำ | ระยะเป้าหมาย |
|---|---|
| Neoseiulus (Amblyseius) cucumeris | ตัวอ่อนวัยแรกเท่านั้น [3] |
| Amblyseius swirskii | ตัวอ่อนวัยที่หนึ่งและวัยที่สอง [3]; รวมถึงไข่และตัวอ่อนแมลงหวี่ขาว ได้ผลดีที่ 20–32 °C ไม่ได้ผลต่ำกว่า 18 °C; อ่อนไหวต่อ RH ที่ต่ำกว่า 60% [7] |
| Orius spp. (มวนโจรสลัด) | เพลี้ยไฟทุกระยะรวมถึงตัวเต็มวัย; ราคาสูงกว่า แต่มีประสิทธิภาพสูงมาก |
ในวัสดุปลูก (ระยะก่อนดักแด้และดักแด้):
| ตัวห้ำ | บันทึกเพิ่มเติม |
|---|---|
| Stratiolaelaps scimitus (ชื่อเดิม Hypoaspis miles) | ไรตัวห้ำในดิน; ควบคุมตัวอ่อนแมลงหวี่ดินได้ด้วย |
| Steinernema feltiae | ไส้เดือนฝอยกำจัดแมลง ใช้ผสมน้ำรดลงวัสดุปลูก |
ทั้งสองชนิดคุ้มค่าที่จะใช้ — S. scimitus แค่ใช้กำจัดแมลงหวี่ดินก็คุ้มค่าแล้ว — แต่ควรอ่านข้อ 8 ก่อนตั้งงบประมาณเพื่อใช้พวกมันเป็นคำตอบหลักในการแก้ปัญหาเพลี้ยไฟ
โปรแกรมการจัดการเพลี้ยไฟแบบหลายชั้น:
- A. swirskii (ห้องที่อบอุ่น) หรือ N. cucumeris บนทรงพุ่ม เพื่อการป้องกันตั้งแต่สัปดาห์ที่ 1
- S. scimitus ใส่ลงในวัสดุปลูกขณะทำการย้ายปลูก
- S. feltiae รดลงวัสดุปลูกเมื่อเกิดการระบาด
- Orius หากประชากรเพลี้ยไฟไม่ลดลงจากการใช้ไรตัวห้ำเพียงอย่างเดียว
- กับดักกาวเหนียวใช้สำหรับการติดตาม ไม่ใช่การควบคุม — แขวนสีฟ้าหรือสีเหลืองไว้เหนือทรงพุ่ม [3] สีฟ้าล่อเพลี้ยไฟตะวันตกได้ดีที่สุด แต่ UC IPM แนะนำสีเหลืองเพราะจับศัตรูพืชชนิดอื่นได้ด้วย ทำให้เห็นภาพรวมได้กว้างกว่า [4]
11. การจัดการเพลี้ยไฟโดยไม่ใช้สารชีวภาพ
Spinosad (สารสกัดจากเชื้อ Saccharopolyspora spinosa) ได้รับการอนุมัติสำหรับเกษตรออร์แกนิกและมีประสิทธิภาพสูงมากในการกำจัดเพลี้ยไฟ — แต่ปัจจุบันเริ่มลดประสิทธิภาพลง มีรายงานการดื้อยาในแปลงปลูกของเพลี้ยไฟตะวันตกในโรงเรือนทางตะวันออกเฉียงใต้ของสเปน [5] และ Kansas State รายงานว่าพบประชากรเพลี้ยไฟที่มีความไวต่อยาลดลงหรือดื้อต่อ spinosad ใน รัฐฟลอริดาและออสเตรเลีย [3] ให้สลับกลุ่มกลไกการออกฤทธิ์ และอย่าสร้างโปรแกรมป้องกันโดยพึ่งพาผลิตภัณฑ์นี้เพียงอย่างเดียว สารนี้เป็นพิษต่อผึ้ง — ห้ามใช้ภายนอกอาคารในช่วงที่พืชผสมเกสร
น้ำมันสะเดา (Neem oil) ออกฤทธิ์ได้ดีกับตัวอ่อนเพลี้ยไฟโดยต้องพ่นให้ทั่วถึงบริเวณผิวใบ; ใช้ข้อจำกัดเดียวกันกับไรแดง
การควบคุมทางเขตกรรม (Cultural controls):
- ตัดและทำลายใบที่มีการระบาดหนักทิ้ง
- รักษาความสะอาดของพื้นห้อง — ดักแด้มักซ่อนตัวตามเศษซากพืช
- ติดมุ้งกันแมลงที่ช่องลมเข้าขนาด 145 ไมครอน (0.145 มม.) — ขนาดรูมุ้งที่ UC IPM ระบุไว้เพื่อป้องกันเพลี้ยไฟ [4]
- หลีกเลี่ยงการสวมเสื้อผ้าสีฟ้าหรือสีเหลืองเข้าไปในห้องปลูก
เรื่องการดื้อยา ชี้แจงไว้อย่างชัดเจน: คำแนะนำของ UC IPM สำหรับสปีชีส์นี้คือ “การดื้อสารกำจัดแมลงเป็นปัญหาใหญ่สำหรับเพลี้ยไฟตะวันตก ดังนั้นควรหมุนเวียนการใช้สารตามกลไกการออกฤทธิ์ของสารกำจัดแมลงที่มีประสิทธิภาพ และอย่าพึ่งพาสารกำจัดแมลงเพียงอย่างเดียว” [4]
12. การจัดการศัตรูพืชแบบผสมผสาน (IPM): กลยุทธ์แบบบูรณาการ
| ขั้นตอน | การปฏิบัติ | ช่วงเวลา |
|---|---|---|
| การป้องกัน | กักกันกิ่งพันธุ์ / โคลน ใหม่เป็นเวลา 7 วัน ติดมุ้งช่องลมเข้าขนาด 145 µm ทำความสะอาดระหว่างรอบปลูก | ตลอดเวลา |
| การติดตาม | ส่องดูใต้ใบสัปดาห์ละครั้งด้วยกล้องขยาย ใช้กับดักกาวเหนียวสีฟ้าหรือสีเหลือง | ทุกสัปดาห์ |
| ฐานชีวภาพป้องกัน | N. californicus หรือ A. andersoni (ไรแดง) + A. swirskii หรือ N. cucumeris (เพลี้ยไฟ) + S. scimitus (วัสดุปลูก) | ตอนย้ายปลูก |
| การตอบสนองระยะแรก | สเปรย์เฉพาะจุดด้วยน้ำมันสะเดาหรือสบู่ออกฤทธิ์กำจัดแมลงตรงบริเวณที่พบปัญหา | เมื่อพบสัญญาณแรก |
| การรักษา | P. persimilis (ไรแดง หากอุณหภูมิต่ำกว่า 30 °C) หรือ Orius (เพลี้ยไฟ); ใช้ spinosad แบบสลับตัวยา | เมื่อเกินระเบียบเกณฑ์ปกติ |
| ทางเลือกสุดท้าย | การใช้สารเคมีเฉพาะจุด โดยหมุนเวียนตามกลุ่มกลไกการออกฤทธิ์ | เฉพาะเมื่อการควบคุมโดยชีววิธีล้มเหลว |
13. การดำเนินโปรแกรมนี้ในสภาพอากาศร้อนชื้น
อัตราการปล่อยและคำแนะนำเกี่ยวกับตัวห้ำเกือบทั้งหมดที่หมุนเวียนอยู่นั้นมาจากโรงเรือนในเขตอบอุ่น การปรับเปลี่ยน 3 ประการนี้จึงมีความสำคัญในประเทศไทยและทั่วภูมิภาคเอเชียตะวันออกเฉียงใต้:
- ตรวจสอบอุณหภูมิระดับทรงพุ่มก่อนสั่งซื้อตัวห้ำ P. persimilis จะไม่ได้ผลเมื่ออุณหภูมิสูงกว่า 30 °C และ A. swirskii จะไม่ได้ผลเมื่ออุณหภูมิต่ำกว่า 18 °C [7] ในห้องปลูกในร่มในไทย ข้อจำกัดที่พบบ่อยที่สุดคืออุณหภูมิสูงเกิน — ซึ่งทำให้ไม่สามารถใช้ตัวห้ำเฉพาะทางไรแดงที่ดีที่สุดได้ และบีบให้คุณต้องใช้ N. californicus (ทนได้ถึง 32 °C) และ A. andersoni แทน
- ความชื้นสัมพัทธ์โดยรอบที่สูงส่งผลทั้งสองด้าน ในแง่หนึ่งมันช่วยกดประชากรไรแดงและเหมาะกับตัวห้ำทุกชนิดในบทความนี้ ซึ่งระบุว่าอ่อนไหวต่อ RH ที่ต่ำกว่า 60–70% [7] แต่อีกแง่หนึ่ง มันจะเพิ่มความเสี่ยงให้เกิดโรคเน่าช่อดอก / โบไทรทิส และราแป้ง ในช่วงดอกสมบูรณ์ ความชื้นจึงเป็นเครื่องมือจัดการไรแดงในระยะทางใบ; แต่ในระยะดอก ความเสี่ยงเรื่องโรคมักจะเป็นปัจจัยที่ต้องระวังมากกว่า
- ตัวห้ำมีอายุจำกัดและส่วนใหญ่เป็นสินค้านำเข้า ระยะเวลาขนส่งและการขนส่งควบคุมอุณหภูมิ (cold chain) ที่ไม่ขาดช่วงคือตัวตัดสินว่าซองบรรจุตัวห้ำจะมาถึงแบบมีชีวิตหรือไม่ วางแผนปล่อยเพื่อการป้องกันที่คุณสามารถกำหนดวันได้ แทนที่จะสั่งซื้อฉุกเฉินซึ่งต้องเสี่ยงกับการขนส่งที่ร้อนจัด
14. แผนรับมือภาวะฉุกเฉิน
ไรแดง — มองเห็นใยแมงมุมแล้ว:
- แยกต้นพืชที่ติดเชื้อออก
- ตัดและทำลายส่วนที่มีใยหนาแน่นที่สุด — ใส่ถุงปิดปากให้สนิทก่อนนำออกจากห้องปลูก
- ใช้น้ำแรงดันสูงฉีดล้างใบส่วนที่เหลือ ทั้งด้านบนและใต้ใบ
- พ่นน้ำมันสะเดาผสมสบู่ช่วงปิดไฟ
- สั่งซื้อ P. persimilis หากห้องสามารถคุมอุณหภูมิให้อยู่ต่ำกว่า 30 °C และ RH สูงกว่า 70% ได้; หากทำไม่ได้ ให้ใช้ไรตัวห้ำทั่วไปร่วมกับโปรแกรมสเปรย์
- ฉีดพ่นน้ำและน้ำมันสะเดาซ้ำทุกๆ 3 วัน เป็นเวลา 2 สัปดาห์
เพลี้ยไฟ — พบรอยเสียหายสีเงินรุนแรง:
- ตัดใบที่เสียหายหนักที่สุดออก
- พ่น spinosad ทางใบ จากนั้นสลับกลุ่มตัวยาในรอบถัดไป
- รด S. feltiae ลงในวัสดุปลูก — โดยตระหนักว่ามันจะเข้าถึงประชากรดักแด้ได้เพียงบางส่วนเท่านั้น
- ติดกับดักกาวเหนียวเพื่อดักจับตัวเต็มวัยที่บินได้และเพื่อประเมินว่าประชากรลดลงจริงหรือไม่
- ใช้ Orius หากมีจำหน่าย
- ทำซ้ำในอีก 5–7 วัน เพื่อกำจัดรุ่นถัดไปที่ฟักออกจากไข่ภายในเนื้อเยื่อใบ
คุณเคยต่อสู้กับศัตรูพืชชนิดใดในแปลงปลูกของคุณบ้าง? การควบคุมโดยชีววิธีได้ผลสำหรับคุณหรือไม่ หรือคุณต้องยกระดับไปใช้สารเคมี? มาร่วมแบ่งปันเรื่องราว กลยุทธ์ที่ประสบความสำเร็จ และบทเรียนราคาแพงของคุณในช่องแสดงความคิดเห็นด้านล่างได้เลย
เอกสารอ้างอิง
- Van Leeuwen, T., Vontas, J., Tsagkarakou, A., Dermauw, W., & Tirry, L. (2010). Acaricide resistance mechanisms in the two-spotted spider mite Tetranychus urticae and other important Acari: a review. Insect Biochemistry and Molecular Biology, 40(8), 563–572.
- University of Florida IFAS Extension. Twospotted spider mite, Tetranychus urticae Koch. Featured Creatures, EENY-150.
- Cloyd, R.A. (2010). Western Flower Thrips Management on Greenhouse-Grown Crops. Kansas State University Research and Extension, MF-2922.
- University of California Statewide IPM Program. Thrips — Floriculture and Ornamental Nurseries, UC Pest Management Guidelines.
- Bielza, P., et al. (2007). Resistance to spinosad in the western flower thrips, Frankliniella occidentalis (Pergande), in greenhouses of south-eastern Spain. Pest Management Science. doi:10.1002/ps.1388
- Chiginsky, J., et al. (2021). First insights into the virus and viroid communities in hemp (Cannabis sativa). Frontiers in Agronomy, 3, 778433.
- Koppert Biological Systems. Technical product information for Phytoseiulus persimilis, Neoseiulus californicus, Amblyseius swirskii and Amblyseius andersoni (supplier data).
บทความนี้เป็นส่วนหนึ่งของซีรีส์ให้ความรู้ด้านการจัดการศัตรูพืชและโรคพืชของชุมชน Asiannabis เนื้อหามีวัตถุประสงค์เพื่อการศึกษาภายในเขตอำนาจรัฐที่อนุญาตให้ปลูกกัญชาได้อย่างถูกต้องตามกฎหมายเท่านั้น