ไรแดง & เพลี้ยไฟ: การระบุชนิด วงจรชีวิต และการควบคุมโดยชีววิธีสำหรับกัญชา

ไรแดง & เพลี้ยไฟ: การระบุชนิด วงจรชีวิต และการควบคุมโดยชีววิธีสำหรับกัญชา

ศัตรูพืชประเภทปากดูดที่พบได้บ่อยที่สุดสองชนิดในการปลูกกัญชา — และอาวุธทางชีวภาพที่จะช่วยกำจัดพวกมันได้โดยไม่ต้องใช้สารเคมี


1. รู้จักศัตรูของคุณ: ทำไมศัตรูพืชสองชนิดนี้ถึงครองพื้นที่

หากคุณปลูกกัญชาในร่ม ในที่สุดคุณจะต้องเผชิญหน้ากับไรแดง เพลี้ยไฟ หรือทั้งสองอย่าง นี่ไม่ใช่เรื่องของโชคร้ายที่เกิดขึ้นลอยๆ — แต่อุณหภูมิที่อบอุ่น ความแห้ง และสภาพแวดล้อมที่อุดมไปด้วยธาตุอาหารในห้องปลูก คือสิ่งที่ศัตรูพืชเหล่านี้วิวัฒนาการมาเพื่อเก็บเกี่ยวผลประโยชน์โดยเฉพาะ การเข้าใจชีววิทยาของพวกมันคือขั้นตอนแรกในการควบคุม


ส่วน A: ไรแดง (Tetranychus urticae)

2. การระบุชนิด

ไรแดงสองจุด (Tetranychus urticae) เป็นศัตรูพืชกลุ่มสัตว์ขาปล้องที่สร้างความเสียหายมากที่สุดให้กับการปลูกกัญชาในร่มทั่วโลก แม้จะมีชื่อเรียกเกี่ยวข้องกับแมงมุม แต่ไรแดงจัดเป็นสัตว์กลุ่มแมง (arachnids) ไม่ใช่แมลง — มี 8 ขา ไม่ใช่ 6 ขา

สิ่งที่คุณจะสังเกตเห็น:

สัญญาณเตือน ระยะของการระบาด
จุดสีขาว/เหลืองขนาดเล็ก (stippling) บนผิวใบด้านบน ระยะแรก — ไรแดงกำลังดูดกินน้ำเลี้ยงอยู่ใต้ใบ
ใบเริ่มมีลักษณะคล้ายมีฝุ่นผงบางๆ เกาะ ระยะแรกถึงปานกลาง
จุดขนาดเล็กที่เคลื่อนไหวได้ (0.3–0.5 มม.) ใต้ใบ มองเห็นได้ชัดด้วยกล้องขยาย 30 เท่า ระยะกำลังดูดกินน้ำเลี้ยงอย่างหนัก
ใยแมงมุมเส้นละเอียดระหว่างใบและบริเวณปลายกิ่ง ระยะลุกลาม — ประชากรไรแดงมีจำนวนมาก
ใบเริ่มเหลือง ม้วนงอ และร่วง ระยะรุนแรง — ต้นพืชเริ่มพ่ายแพ้
ใยหนาแน่นปกคลุมทั่วช่อดอกและยอด ระยะวิกฤต — สูญเสียผลผลิตเกือบทั้งหมดหากไม่ได้รับการรักษา

สัญญาณแรกเริ่มที่สำคัญคือ รอยจุดด่าง (stippling) — จุดสีซีดบนผิวใบด้านบน มักหนาแน่นตามเส้นกลางใบและเส้นใบ ซึ่งสามารถมองเห็นได้ด้วยตาเปล่าก่อนที่จะเห็นตัวไรแดงเสียอีก หากคุณเห็นรอยจุดด่าง ให้พลิกใบและส่องดูใต้ใบด้วยกล้องขยาย 30 เท่า จะพบไรแดงปรากฏเป็นจุดเล็กๆ ที่เคลื่อนไหวได้ มักรวมกลุ่มอยู่ใกล้เส้นใบ

3. วงจรชีวิต: ทำไมพวกมันถึงเพิ่มจำนวนได้อย่างรวดเร็ว

วงจรชีวิตประกอบด้วย ระยะไข่, ตัวอ่อนวัยแรก (larva), ระยะตัวอ่อนสองวัย (protonymph และ deutonymph) และตัวเต็มวัย [2]

ระยะ บันทึกเพิ่มเติม
ไข่ กลม ใส อยู่ใต้ใบ
ตัวอ่อนวัยแรก (Larva) มี 6 ขา
Protonymph มี 8 ขา
Deutonymph มี 8 ขา
ตัวเมียเต็มวัย มีชีวิตอยู่ได้ 2–4 สัปดาห์ [2]
ระยะไข่ถึงตัวเต็มวัย 5–20 วัน ที่อุณหภูมิประมาณ 27 °C (80 °F) [2]

ตัวเมียหนึ่งตัวสามารถวางไข่ได้ หลายร้อยฟอง ตลอดช่วงชีวิต [2] เมื่อรวมกับระยะเวลาการเจริญเติบโตที่อาจน้อยกว่าหนึ่งสัปดาห์ในห้องปลูกที่ร้อน นี่จึงเป็นปัญหาทั้งหมด: เมื่อถึงเวลาที่คุณเห็นใยแมงมุม ประชากรของพวกมันก็ได้สะสมและเติบโตมานานหลายสัปดาห์แล้ว

การพึ่งพาอุณหภูมิ ไรแดงจะเจริญเติบโตได้ดีที่สุดในสภาพอากาศร้อนและแห้ง สภาพอากาศที่เย็นและมีความชื้นจะช่วยชะลอการเจริญเติบโตของพวกมัน — ซึ่งเป็นหนึ่งในปัจจัยทางสภาพแวดล้อมไม่กี่อย่างที่คุณสามารถควบคุมได้โดยตรง

การพักตัว (Diapause) เมื่อความยาวของวันสั้นลงหรืออุณหภูมิลดลง ตัวเมียสามารถเข้าสู่ภาวะพักตัวได้: พวกมันจะหยุดกินอาหารและหยุดสืบพันธุ์ เปลี่ยนสีเป็น สีส้มถึงแดงส้ม และซ่อนตัวตามเศษซากพืช รอยแตก หรือโครงสร้างของห้องปลูก [2] พวกมันจะกลับออกมาอีกครั้งเมื่อสภาพแวดล้อมเหมาะสมขึ้น นี่คือเหตุผลที่การทำความสะอาดห้องปลูกระหว่างรอบปลูกจึงเป็นสิ่งที่มองข้ามไม่ได้

4. การดื้อสารกำจัดศัตรูพืช: สงครามที่สารเคมีไม่มีวันชนะ

นี่ไม่ใช่แค่ความคิดเห็น Tetranychus urticae ถือครองสิ่งที่รายงานการวิจารณ์มาตรฐานเรียกว่า “ชื่อเสียงอันน่ากังขาในการเป็น ‘สปีชีส์ที่ดื้อยาที่สุด’ ในแง่ของจำนวนรวมของสารกำจัดศัตรูพืชที่ประชากรของมันสร้างการดื้อยาขึ้นมา” [1] รายงานระบุว่าเกิดจากลักษณะทางชีววิทยา 3 ประการ: วงจรชีวิตที่สั้น, จำนวนลูกหลานที่มหาศาล และการสืบพันธุ์แบบกำเนิดจากไข่ไม่ปฏิสนธิ (arrhenotokous reproduction) — โดยตัวผู้จะพัฒนามาจากไข่ที่ไม่ได้ผสม ดังนั้นยีนดื้อยาจึงแสดงออกทันทีแทนที่จะซ่อนอยู่ในยีนเฮเทอโรไซกัส [1]

การดื้อยาที่ได้รับการบันทึกไว้ในประชากรไรแดงตามโรงเรือนและแปลงปลูกครอบคลุมถึงสารเคมีกลุ่มต่างๆ เช่น:

  • สารกลุ่มไพรีทรอยด์ (bifenthrin, permethrin)
  • สารกลุ่มออร์กาโนฟอสเฟต
  • Abamectin (Avid)
  • Spiromesifen (Oberon)
  • Etoxazole (TetraSan)

กลยุทธ์การใช้สารเคมีเพียงอย่างเดียวในการปลูกกัญชาเป็นเกมที่แพ้ตั้งแต่เริ่มต้น — ไม่ใช่เพราะสารเคมีไม่เคยได้ผล แต่เป็นเพราะศัตรูพืชสปีชีส์นี้เป็นสัตว์ขาปล้องที่มีความสามารถในการปรับตัวเหนือกว่าสารเคมีดีที่สุด การควบคุมโดยชีววิธีจึงไม่ใช่แค่ทางเลือกแบบออร์แกนิกที่น่ารัก แต่เป็นกลยุทธ์ที่ไม่มีวันหมดอายุ

5. การควบคุมโดยชีววิธี: ไรตัวห้ำ (Predatory Mites)

การควบคุมโดยชีววิธีอาศัยการปลดปล่อยไรตัวห้ำที่กินไรแดงเป็นอาหาร ควรอ่านข้อจำกัดด้านอุณหภูมิและความชื้นก่อนเลือกใช้ — ปัจจัยเหล่านี้คือเหตุผลที่ทำให้การปล่อยแมลงศัตรูธรรมชาติล้มเหลวในห้องหนึ่ง แต่ได้ผลดีในอีกห้องหนึ่ง

ตัวห้ำ ช่วงอุณหภูมิที่ได้ผล (ข้อมูลจากผู้ผลิต) รอดชีวิตได้ไหมหากไม่มีไรแดง?
Phytoseiulus persimilis 13–27 °C; ไม่ได้ผลที่อุณหภูมิสูงกว่า 30 °C อ่อนไหวต่อ RH ที่ต่ำกว่า 70% ไม่รอด — ประชากรจะลดลงอย่างรวดเร็วและกินกันเองเมื่อไม่มีเหยื่อ [7]
Neoseiulus californicus (ชื่อเดิม Amblyseius) 13–32 °C อ่อนไหวต่อ RH ที่ต่ำกว่า 60% รอด — สามารถกินไรชนิดอื่น เพลี้ยไฟ และเกสรดอกไม้เป็นอาหารได้; รอดชีวิตได้นานกว่า P. persimilis แม้ไม่มีอาหาร [7]
Amblyseius andersoni ได้ผล สูงกว่า 14 °C, เหมาะสมที่สุดที่ 20–28 °C อ่อนไหวต่อ RH ที่ต่ำกว่า 65% รอด — กินเกสรดอกไม้เป็นอาหาร ตั้งรกรากได้ก่อนที่ศัตรูพืชจะมาถึง [7]

อัตราการกินเหยื่อ ที่อุณหภูมิประมาณ 20 °C ร่วมกับปริมาณเหยื่อที่เพียงพอ ตัวเมียเต็มวัยของ P. persimilis สามารถกิน ไรแดงตัวเต็มวัยได้สูงสุด 5 ตัว หรือกินตัวอ่อนวัยแรกและไข่ได้ถึง 20 ฟองต่อวัน และเจริญเติบโตได้เร็วกว่าไรแดงประมาณสองเท่า [7] ความเร็วนี้เองที่ทำให้มันสามารถกำจัดไรแดงที่กำลังระบาดได้อย่างรวดเร็ว — และเป็นเหตุผลว่าทำไมมันถึงหายไปเมื่อการระบาดหมดลง

ข้อควรระวังสำคัญสองประการที่มีความสำคัญมากกว่าอัตราการปล่อย:

  • P. persimilis จะหยุดทำงานที่อุณหภูมิสูงกว่า 30 °C [7] ห้องปลูกหลายแห่งในประเทศไทยมีอุณหภูมิสูงกว่านั้นในระดับทรงพุ่มช่วงเปิดไฟ หากห้องของคุณเป็นเช่นนั้น ตัวห้ำชนิดนี้จะไม่ใช่เครื่องมือที่ถูกต้องไม่ว่าจะดูดีแค่ไหนในการทดสอบจากฝั่งยุโรปก็ตาม
  • A. andersoni ถูกระบุไว้สำหรับไรแดงประเภทที่ไม่สร้างใย เช่น ไรแดงยุโรป (Panonychus ulmi) รวมถึงตัวอ่อนเพลี้ยไฟ แมลงหวี่ขาว และไรสนิม [7] — มันเป็นตัวห้ำทั่วไปสำหรับคุมพื้นที่ ไม่ใช่ตัวห้ำเฉพาะทางที่จะกำจัดไรแดง T. urticae ที่กำลังระบาดหนัก

กลยุทธ์ที่สรุปได้จากข้อจำกัดเหล่านี้:

  1. การป้องกัน: ใช้ตัวห้ำแบบทั่วไปที่รอดชีวิตได้โดยไม่ต้องมีเหยื่อ — เช่น N. californicus หรือ A. andersoni ในห้องที่อบอุ่น — โดยปล่อยตั้งแต่เริ่มต้นรอบปลูก เพื่อให้มีประชากรตัวห้ำเตรียมพร้อมอยู่แล้วเมื่อศัตรูพืชมาถึง
  2. การรักษา: ใช้ P. persimilis เมื่อตรวจพบการระบาด หากอุณหภูมิในห้องต่ำกว่า 30 °C และมีความชื้น RH สูงกว่า 70% หากไม่เข้าเงื่อนไข ให้กลับไปใช้ไรตัวห้ำทั่วไปร่วมกับมาตรการทางกายภาพและสารสกัดธรรมชาติในข้อ 6
  3. รักษาสภาพแวดล้อมที่เอื้อต่อตัวห้ำ ไม่ใช่ศัตรูพืช ปฏิบัติตามอัตราการปล่อยของผู้ผลิตตามขนาดพืชและปริมาตรห้องปลูกของคุณ อัตราจะแตกต่างกันไปตามรูปแบบผลิตภัณฑ์และความกดดันของศัตรูพืช และอัตราที่คัดลอกมาจากบทความจะมีค่าน้อยกว่าอัตราที่ระบุไว้บนซองบรรจุภัณฑ์

6. การจัดการไรแดงโดยไม่ใช้สารชีวภาพ

การกำจัดทางกายภาพ การใช้น้ำแรงดันสูงฉีดใต้ใบจะช่วยน็อคตัวเต็มวัยและไข่ให้หลุดออก ทำซ้ำทุกๆ 3 วัน เป็นเวลา 2 สัปดาห์ เพื่อตัดวงจรชีวิต

การสเปรย์ด้วยสารสกัดทางชีวภาพและสารที่มีความเป็นพิษต่ำ

  • น้ำมันสะเดา (neem oil) (สกัดเย็น): 5 มล./ลิตร ผสมสบู่เหลว 2 มล./ลิตร เพื่อเป็นสารประสาน ฉีดพ่นช่วงปิดไฟ ช่วยขัดขวางการกินอาหารและการสืบพันธุ์ ห้ามใช้หลังจากช่วงสัปดาห์ที่ 3 ของระยะออกดอก เนื่องจากส่งผลต่อรสชาติและกลิ่น
  • สบู่ออกฤทธิ์กำจัดแมลง (Insecticidal soap) (เกลือโพแทสเซียมของกรดไขมัน): ออกฤทธิ์น็อคเมื่อสัมผัสตัว ไม่มีสารตกค้าง สามารถใช้ในระยะหลังของรอบปลูกได้
  • การสเปรย์ด้วยกำมะถัน: มีประสิทธิภาพสูง แต่ ห้ามใช้ภายใน 2 สัปดาห์ก่อนหรือหลังการสเปรย์ด้วยน้ำมันทุกชนิด — การใช้ร่วมกันจะทำให้ใบไหม้

การปรับเปลี่ยนสภาพแวดล้อม การเพิ่มความชื้นและหลีกเลี่ยงไม่ให้ทรงพุ่มร้อนและแห้งจะช่วยยับยั้งการสืบพันธุ์ แต่ข้อเสียคือ สภาพอากาศชื้นเช่นนี้อาจเอื้อต่อการเกิดโรคเน่าช่อดอก / โบไทรทิส และราแป้ง ในช่วงดอก ดังนั้นการปรับปัจจัยนี้จึงทำได้ง่ายในระยะทางใบ แต่มียอดความเสี่ยงสูงในช่วงดอกสมบูรณ์


ส่วน B: เพลี้ยไฟ (Frankliniella occidentalis และชนิดอื่นๆ)

7. การระบุชนิด

เพลี้ยไฟเป็นแมลงขนาดเล็กมาก (1–2 มม.) ลำตัวยาวเรียว ออกฤทธิ์ดูดและขูดเนื้อเยื่อเซลล์ สปีชีส์ที่พบได้บ่อยที่สุดในกัญชาคือ เพลี้ยไฟตะวันตก (Frankliniella occidentalis) ซึ่งเป็นศัตรูพืชระดับโลกในโรงเรือน

สัญญาณเตือน รายละเอียด
รอยเส้นหรือแผลแถบสีเงิน/สีทองบรอนซ์บนใบ เกิดจากเซลล์พืชที่สูญเสียน้ำเลี้ยงและสะท้อนแสง
จุดสีดำขนาดเล็กบนใบ มูลของเพลี้ยไฟ
แมลงตัวเล็กเรียวยาวบนใบและตามกลุ่มช่อดอก ตัวเต็มวัยยาว 1–1.5 มม. สีเหลืองซีดถึงน้ำตาล เคลื่อนไหวรวดเร็ว
ยอดใหม่ม้วนงอหรือบิดเบี้ยว เกิดจากการถูกดูดกินน้ำเลี้ยงอย่างหนักในเนื้อเยื่ออ่อน
รอยแผลเป็นสีเข้มบนช่อดอก ความเสียหายจากการดูดกินในช่อดอก — จัดเป็นตำหนิด้านคุณภาพ

ไม่เหมือนกับไรแดง เพลี้ยไฟเป็นแมลงที่ เคลื่อนไหวได้สูง — พวกมันสามารถบิน กระโดด และแพร่กระจายไปทั่วห้องปลูกได้ภายในไม่กี่วัน

8. วงจรชีวิต — และมายาคติเรื่องการเข้าดักแด้

ระยะ ตำแหน่งที่พบ
ไข่ ถูกฝังอยู่ ภายใน เนื้อเยื่อใบ
ตัวอ่อนวัยที่ 1 และ 2 ดำรงชีวิตดูดกินน้ำเลี้ยง บนผิวใบ
ระยะก่อนดักแด้และดักแด้ หยุดกินอาหาร — ดูรายละเอียดด้านล่าง
ตัวเต็มวัย ดูดกินอาหารและสืบพันธุ์ บนใบและช่อดอก

คำแนะนำทั่วไปมักบอกว่า ระยะก่อนดักแด้และระยะดักแด้จะอาศัยอยู่ในวัสดุปลูก ดังนั้นการจัดการดินจึงตัดวงจรชีวิตได้ ซึ่งนั่น ถูกต้องเพียงครึ่งเดียว และครึ่งที่ผิดพลาดนั้นทำให้คุณสูญเสียเงิน ข้อมูลจาก UC IPM ระบุว่า ระยะก่อนดักแด้และดักแด้จะเกิดขึ้นในวัสดุปลูกหรือดินใต้ต้นพืชที่ติดเชื้อ ขณะที่ข้อมูลส่งเสริมการเกษตรของ Kansas State ให้รายละเอียดที่เฉพาะเจาะจงกว่าว่า: เพลี้ยไฟตะวันตก “เข้าดักแด้ตามเศษซากใบ บนตัวต้นพืช และในดอกที่บานของพืชบางชนิด” แม้ว่าทั้งสองระยะจะ พบได้บ่อย ในวัสดุปลูกหรือดินใต้โต๊ะปลูกก็ตาม [3][4]

ผลลัพธ์คือ: ชีววุธที่ใส่ลงในดินไม่สามารถเข้าถึงดักแด้ที่อยู่บนต้นพืชได้ และเอกสารฉบับเดียวกันของ Kansas State ก็เตือนว่า สารควบคุมที่มุ่งเป้าไปที่ระยะที่อยู่อาศัยในดิน “อาจไม่ให้การควบคุมหรือยับยั้งที่เพียงพอ (อ้างอิงจากเปอร์เซ็นต์การตาย) ของระยะชีวิตที่อยู่อาศัยในดิน (ดักแด้) เพื่อส่งผลกระทบอย่างมีนัยสำคัญต่อประชากรเพลี้ยไฟตะวันตก” [3] จงจัดการดินให้เป็นเพียงชั้นหนึ่งในหลายๆ ชั้นของการป้องกัน ไม่ใช่ขั้นตอนเดียวที่จบกระบวนการ

9. เพลี้ยไฟและไวรัส — สิ่งที่มีการบันทึกไว้อย่างแท้จริงในกัญชา

เพลี้ยไฟเป็นพาหะนำโรคไวรัสกลุ่ม Tospovirus เช่น ไวรัสโรคเหี่ยวแห้งจุดส้มในมะเขือเทศ (TSWV) ในพืชหลายชนิด และสิ่งนี้มักถูกนำมาอ้างอิงในงานเขียนเกี่ยวกับกัญชาว่าเป็นภัยคุกคามหลัก แต่หากนำมาใช้กับกัญชา ข้อกล่าวอ้างนั้นยังไม่ได้รับการสนับสนุนจากงานสำรวจในปัจจุบัน

การสำรวจไวรัสและไวรอยด์ในกัญชงเป็นวงกว้างครั้งแรก — ตรวจพบไวรัส 7 ชนิดและไวรอยด์ 1 ชนิดทั่วรัฐโคโลราโด — ไม่พบ TSWV หรือไวรัสกลุ่ม Tospovirus ใดๆ แต่สิ่งที่พบในอัตราที่สูงมากคือ Beet curly top virus ซึ่งพบใน 81% ของตัวอย่าง (109 จาก 134 ตัวอย่าง) พร้อมกับ Hop latent viroid และอื่นๆ [6] ซึ่ง BCTV มีพาหะนำโรคคือเพลี้ยกระโดดสีบีท ไม่ใช่เพลี้ยไฟ

ดังนั้น: กำจัดเพลี้ยไฟเพราะพวกมันทำลายพืชโดยตรงจากการดูดกินและสร้างรอยแผลเป็นบนช่อดอก — ซึ่งเป็นปัญหาต่อคุณภาพและการจัดเกรดดอกกัญชาที่เกิดขึ้นจริง — ไม่ใช่เพราะความเสี่ยงด้านไวรัสในกัญชาที่ยังไม่มีการพิสูจน์ หากผู้ขายหรือบทความใดบอกคุณเป็นอย่างอื่น ให้ถามว่ามาจากผลการศึกษาในกัญชาฉบับใด

10. การควบคุมโดยชีววิธี: ตัวห้ำสำหรับเพลี้ยไฟ

บนต้นพืช (ตัวอ่อน):

ตัวห้ำ ระยะเป้าหมาย
Neoseiulus (Amblyseius) cucumeris ตัวอ่อนวัยแรกเท่านั้น [3]
Amblyseius swirskii ตัวอ่อนวัยที่หนึ่งและวัยที่สอง [3]; รวมถึงไข่และตัวอ่อนแมลงหวี่ขาว ได้ผลดีที่ 20–32 °C ไม่ได้ผลต่ำกว่า 18 °C; อ่อนไหวต่อ RH ที่ต่ำกว่า 60% [7]
Orius spp. (มวนโจรสลัด) เพลี้ยไฟทุกระยะรวมถึงตัวเต็มวัย; ราคาสูงกว่า แต่มีประสิทธิภาพสูงมาก

ในวัสดุปลูก (ระยะก่อนดักแด้และดักแด้):

ตัวห้ำ บันทึกเพิ่มเติม
Stratiolaelaps scimitus (ชื่อเดิม Hypoaspis miles) ไรตัวห้ำในดิน; ควบคุมตัวอ่อนแมลงหวี่ดินได้ด้วย
Steinernema feltiae ไส้เดือนฝอยกำจัดแมลง ใช้ผสมน้ำรดลงวัสดุปลูก

ทั้งสองชนิดคุ้มค่าที่จะใช้ — S. scimitus แค่ใช้กำจัดแมลงหวี่ดินก็คุ้มค่าแล้ว — แต่ควรอ่านข้อ 8 ก่อนตั้งงบประมาณเพื่อใช้พวกมันเป็นคำตอบหลักในการแก้ปัญหาเพลี้ยไฟ

โปรแกรมการจัดการเพลี้ยไฟแบบหลายชั้น:

  1. A. swirskii (ห้องที่อบอุ่น) หรือ N. cucumeris บนทรงพุ่ม เพื่อการป้องกันตั้งแต่สัปดาห์ที่ 1
  2. S. scimitus ใส่ลงในวัสดุปลูกขณะทำการย้ายปลูก
  3. S. feltiae รดลงวัสดุปลูกเมื่อเกิดการระบาด
  4. Orius หากประชากรเพลี้ยไฟไม่ลดลงจากการใช้ไรตัวห้ำเพียงอย่างเดียว
  5. กับดักกาวเหนียวใช้สำหรับการติดตาม ไม่ใช่การควบคุม — แขวนสีฟ้าหรือสีเหลืองไว้เหนือทรงพุ่ม [3] สีฟ้าล่อเพลี้ยไฟตะวันตกได้ดีที่สุด แต่ UC IPM แนะนำสีเหลืองเพราะจับศัตรูพืชชนิดอื่นได้ด้วย ทำให้เห็นภาพรวมได้กว้างกว่า [4]

11. การจัดการเพลี้ยไฟโดยไม่ใช้สารชีวภาพ

Spinosad (สารสกัดจากเชื้อ Saccharopolyspora spinosa) ได้รับการอนุมัติสำหรับเกษตรออร์แกนิกและมีประสิทธิภาพสูงมากในการกำจัดเพลี้ยไฟ — แต่ปัจจุบันเริ่มลดประสิทธิภาพลง มีรายงานการดื้อยาในแปลงปลูกของเพลี้ยไฟตะวันตกในโรงเรือนทางตะวันออกเฉียงใต้ของสเปน [5] และ Kansas State รายงานว่าพบประชากรเพลี้ยไฟที่มีความไวต่อยาลดลงหรือดื้อต่อ spinosad ใน รัฐฟลอริดาและออสเตรเลีย [3] ให้สลับกลุ่มกลไกการออกฤทธิ์ และอย่าสร้างโปรแกรมป้องกันโดยพึ่งพาผลิตภัณฑ์นี้เพียงอย่างเดียว สารนี้เป็นพิษต่อผึ้ง — ห้ามใช้ภายนอกอาคารในช่วงที่พืชผสมเกสร

น้ำมันสะเดา (Neem oil) ออกฤทธิ์ได้ดีกับตัวอ่อนเพลี้ยไฟโดยต้องพ่นให้ทั่วถึงบริเวณผิวใบ; ใช้ข้อจำกัดเดียวกันกับไรแดง

การควบคุมทางเขตกรรม (Cultural controls):

  • ตัดและทำลายใบที่มีการระบาดหนักทิ้ง
  • รักษาความสะอาดของพื้นห้อง — ดักแด้มักซ่อนตัวตามเศษซากพืช
  • ติดมุ้งกันแมลงที่ช่องลมเข้าขนาด 145 ไมครอน (0.145 มม.) — ขนาดรูมุ้งที่ UC IPM ระบุไว้เพื่อป้องกันเพลี้ยไฟ [4]
  • หลีกเลี่ยงการสวมเสื้อผ้าสีฟ้าหรือสีเหลืองเข้าไปในห้องปลูก

เรื่องการดื้อยา ชี้แจงไว้อย่างชัดเจน: คำแนะนำของ UC IPM สำหรับสปีชีส์นี้คือ “การดื้อสารกำจัดแมลงเป็นปัญหาใหญ่สำหรับเพลี้ยไฟตะวันตก ดังนั้นควรหมุนเวียนการใช้สารตามกลไกการออกฤทธิ์ของสารกำจัดแมลงที่มีประสิทธิภาพ และอย่าพึ่งพาสารกำจัดแมลงเพียงอย่างเดียว” [4]


12. การจัดการศัตรูพืชแบบผสมผสาน (IPM): กลยุทธ์แบบบูรณาการ

ขั้นตอน การปฏิบัติ ช่วงเวลา
การป้องกัน กักกันกิ่งพันธุ์ / โคลน ใหม่เป็นเวลา 7 วัน ติดมุ้งช่องลมเข้าขนาด 145 µm ทำความสะอาดระหว่างรอบปลูก ตลอดเวลา
การติดตาม ส่องดูใต้ใบสัปดาห์ละครั้งด้วยกล้องขยาย ใช้กับดักกาวเหนียวสีฟ้าหรือสีเหลือง ทุกสัปดาห์
ฐานชีวภาพป้องกัน N. californicus หรือ A. andersoni (ไรแดง) + A. swirskii หรือ N. cucumeris (เพลี้ยไฟ) + S. scimitus (วัสดุปลูก) ตอนย้ายปลูก
การตอบสนองระยะแรก สเปรย์เฉพาะจุดด้วยน้ำมันสะเดาหรือสบู่ออกฤทธิ์กำจัดแมลงตรงบริเวณที่พบปัญหา เมื่อพบสัญญาณแรก
การรักษา P. persimilis (ไรแดง หากอุณหภูมิต่ำกว่า 30 °C) หรือ Orius (เพลี้ยไฟ); ใช้ spinosad แบบสลับตัวยา เมื่อเกินระเบียบเกณฑ์ปกติ
ทางเลือกสุดท้าย การใช้สารเคมีเฉพาะจุด โดยหมุนเวียนตามกลุ่มกลไกการออกฤทธิ์ เฉพาะเมื่อการควบคุมโดยชีววิธีล้มเหลว

13. การดำเนินโปรแกรมนี้ในสภาพอากาศร้อนชื้น

อัตราการปล่อยและคำแนะนำเกี่ยวกับตัวห้ำเกือบทั้งหมดที่หมุนเวียนอยู่นั้นมาจากโรงเรือนในเขตอบอุ่น การปรับเปลี่ยน 3 ประการนี้จึงมีความสำคัญในประเทศไทยและทั่วภูมิภาคเอเชียตะวันออกเฉียงใต้:

  • ตรวจสอบอุณหภูมิระดับทรงพุ่มก่อนสั่งซื้อตัวห้ำ P. persimilis จะไม่ได้ผลเมื่ออุณหภูมิสูงกว่า 30 °C และ A. swirskii จะไม่ได้ผลเมื่ออุณหภูมิต่ำกว่า 18 °C [7] ในห้องปลูกในร่มในไทย ข้อจำกัดที่พบบ่อยที่สุดคืออุณหภูมิสูงเกิน — ซึ่งทำให้ไม่สามารถใช้ตัวห้ำเฉพาะทางไรแดงที่ดีที่สุดได้ และบีบให้คุณต้องใช้ N. californicus (ทนได้ถึง 32 °C) และ A. andersoni แทน
  • ความชื้นสัมพัทธ์โดยรอบที่สูงส่งผลทั้งสองด้าน ในแง่หนึ่งมันช่วยกดประชากรไรแดงและเหมาะกับตัวห้ำทุกชนิดในบทความนี้ ซึ่งระบุว่าอ่อนไหวต่อ RH ที่ต่ำกว่า 60–70% [7] แต่อีกแง่หนึ่ง มันจะเพิ่มความเสี่ยงให้เกิดโรคเน่าช่อดอก / โบไทรทิส และราแป้ง ในช่วงดอกสมบูรณ์ ความชื้นจึงเป็นเครื่องมือจัดการไรแดงในระยะทางใบ; แต่ในระยะดอก ความเสี่ยงเรื่องโรคมักจะเป็นปัจจัยที่ต้องระวังมากกว่า
  • ตัวห้ำมีอายุจำกัดและส่วนใหญ่เป็นสินค้านำเข้า ระยะเวลาขนส่งและการขนส่งควบคุมอุณหภูมิ (cold chain) ที่ไม่ขาดช่วงคือตัวตัดสินว่าซองบรรจุตัวห้ำจะมาถึงแบบมีชีวิตหรือไม่ วางแผนปล่อยเพื่อการป้องกันที่คุณสามารถกำหนดวันได้ แทนที่จะสั่งซื้อฉุกเฉินซึ่งต้องเสี่ยงกับการขนส่งที่ร้อนจัด

14. แผนรับมือภาวะฉุกเฉิน

ไรแดง — มองเห็นใยแมงมุมแล้ว:

  1. แยกต้นพืชที่ติดเชื้อออก
  2. ตัดและทำลายส่วนที่มีใยหนาแน่นที่สุด — ใส่ถุงปิดปากให้สนิทก่อนนำออกจากห้องปลูก
  3. ใช้น้ำแรงดันสูงฉีดล้างใบส่วนที่เหลือ ทั้งด้านบนและใต้ใบ
  4. พ่นน้ำมันสะเดาผสมสบู่ช่วงปิดไฟ
  5. สั่งซื้อ P. persimilis หากห้องสามารถคุมอุณหภูมิให้อยู่ต่ำกว่า 30 °C และ RH สูงกว่า 70% ได้; หากทำไม่ได้ ให้ใช้ไรตัวห้ำทั่วไปร่วมกับโปรแกรมสเปรย์
  6. ฉีดพ่นน้ำและน้ำมันสะเดาซ้ำทุกๆ 3 วัน เป็นเวลา 2 สัปดาห์

เพลี้ยไฟ — พบรอยเสียหายสีเงินรุนแรง:

  1. ตัดใบที่เสียหายหนักที่สุดออก
  2. พ่น spinosad ทางใบ จากนั้นสลับกลุ่มตัวยาในรอบถัดไป
  3. รด S. feltiae ลงในวัสดุปลูก — โดยตระหนักว่ามันจะเข้าถึงประชากรดักแด้ได้เพียงบางส่วนเท่านั้น
  4. ติดกับดักกาวเหนียวเพื่อดักจับตัวเต็มวัยที่บินได้และเพื่อประเมินว่าประชากรลดลงจริงหรือไม่
  5. ใช้ Orius หากมีจำหน่าย
  6. ทำซ้ำในอีก 5–7 วัน เพื่อกำจัดรุ่นถัดไปที่ฟักออกจากไข่ภายในเนื้อเยื่อใบ

คุณเคยต่อสู้กับศัตรูพืชชนิดใดในแปลงปลูกของคุณบ้าง? การควบคุมโดยชีววิธีได้ผลสำหรับคุณหรือไม่ หรือคุณต้องยกระดับไปใช้สารเคมี? มาร่วมแบ่งปันเรื่องราว กลยุทธ์ที่ประสบความสำเร็จ และบทเรียนราคาแพงของคุณในช่องแสดงความคิดเห็นด้านล่างได้เลย


เอกสารอ้างอิง

  1. Van Leeuwen, T., Vontas, J., Tsagkarakou, A., Dermauw, W., & Tirry, L. (2010). Acaricide resistance mechanisms in the two-spotted spider mite Tetranychus urticae and other important Acari: a review. Insect Biochemistry and Molecular Biology, 40(8), 563–572.
  2. University of Florida IFAS Extension. Twospotted spider mite, Tetranychus urticae Koch. Featured Creatures, EENY-150.
  3. Cloyd, R.A. (2010). Western Flower Thrips Management on Greenhouse-Grown Crops. Kansas State University Research and Extension, MF-2922.
  4. University of California Statewide IPM Program. Thrips — Floriculture and Ornamental Nurseries, UC Pest Management Guidelines.
  5. Bielza, P., et al. (2007). Resistance to spinosad in the western flower thrips, Frankliniella occidentalis (Pergande), in greenhouses of south-eastern Spain. Pest Management Science. doi:10.1002/ps.1388
  6. Chiginsky, J., et al. (2021). First insights into the virus and viroid communities in hemp (Cannabis sativa). Frontiers in Agronomy, 3, 778433.
  7. Koppert Biological Systems. Technical product information for Phytoseiulus persimilis, Neoseiulus californicus, Amblyseius swirskii and Amblyseius andersoni (supplier data).

บทความนี้เป็นส่วนหนึ่งของซีรีส์ให้ความรู้ด้านการจัดการศัตรูพืชและโรคพืชของชุมชน Asiannabis เนื้อหามีวัตถุประสงค์เพื่อการศึกษาภายในเขตอำนาจรัฐที่อนุญาตให้ปลูกกัญชาได้อย่างถูกต้องตามกฎหมายเท่านั้น