대마의 성별: 수그루·암그루·자웅동체 구별법, DNA 검사, 자웅동체 예방법

ChillTokin · 7월 24, 2026, 7:20오전

대마(Cannabis sativa L.)는 자웅이주 식물입니다. 수꽃과 암꽃이 보통 서로 다른 개체에 핀다는 뜻입니다. 그런데 일부 개체는 두 종류의 꽃을 모두 피웁니다. 이런 자웅동체(흔히 '험(herm)'이라고 부름)는 꽤 흔합니다. 하나라도 놓치면 그 꽃가루가 작물 곳곳에 씨를 맺게 해 수확물의 가치가 떨어집니다.

이 글은 네 가지를 다룹니다. 식물의 성별이 어떻게 정해지는지, 성별을 어떻게 일찍 알아보는지, 식물이 왜 자웅동체가 되는지, 자웅동체를 어떻게 예방하는지입니다. "역자 주"로 표시한 문단은 태국과 동남아시아에 해당하는 조건을 덧붙인 것입니다.

이번 시즌에 할 다섯 가지

매 사이클을 시작하기 전에 개화실에 빛이 새는 곳이 있는지 점검하세요. 소등 시간(암기) 중 빛이 새는 것이 스트레스성 자웅동체의 가장 흔한 원인입니다.
개화 첫 2주 동안 모든 개체를 매일 살펴보세요. 수꽃이 열려 꽃가루를 날리기 전에 찾아내는 것이 목표입니다.
개화실은 20–26 °C로 유지하고 28 °C를 넘기지 마세요. 개화기에 30 °C 이상이 오래 이어진 식물은 자웅동체가 될 가능성이 높습니다.
유전적 자웅동체 개체는 제거하세요. 그 형질이 다음 세대로 전해지므로 그 개체에서 삽수나 씨앗을 절대 받지 마세요.
품종별·종자 배치별로 자웅동체가 몇 그루 나왔는지 간단히 기록하세요. 몇 사이클이 지나면 어떤 유전 계통이 안정적인지 기록으로 알 수 있습니다.

1. 대마의 성별은 어떻게 정해질까

세 가지 유형의 식물

암그루(): 재배자가 수확하는 버드(꽃송이)를 만듭니다. 암꽃은 카나비노이드 함량이 가장 높습니다. 카나비노이드는 THC, CBD 같은 유효 성분입니다.
수그루(): 버드 대신 화분낭을 만듭니다. 수그루 한 그루가 재배실 전체를 수분시킬 수 있습니다. 한 연구에서 수정된 꽃은 수분되지 않은 꽃에 비해 총 카나비노이드 함량이 THC가 많은 개체에서는 약 75%, CBD가 많은 개체에서는 약 60% 낮았습니다(Feder et al., 2021).
자웅동체: 한 개체에 수꽃과 암꽃이 함께 핍니다. 자웅동체에는 두 가지 유형이 있습니다. 진성 자웅동체는 그 형질을 유전자에 지니고 있습니다. 스트레스 유발성 자웅동체는 환경에 반응한 결과입니다. 두 유형은 3장에서 다룹니다.

XX/XY 체계

대마는 사람처럼 성염색체를 가지고 있습니다. XX 개체는 암그루, XY 개체는 수그루입니다. X 염색체의 상당 부분은 Y 염색체와 DNA를 교환하지 않습니다. 이 ‘비재조합 영역’ 때문에 두 염색체는 오랜 세월에 걸쳐 서로 크게 달라졌습니다.

Prentout et al.(2020)은 대마의 XY 쌍이 지금까지 기록된 식물 성염색체 체계 가운데 가장 오래된 것일 수 있다고 봅니다. 후속 연구(Prentout et al., 2021)에서는 홉(Humulus)도 같은 염색체 쌍을 가지고 있다는 사실이 밝혀졌습니다. 재배자에게 이것이 중요한 이유는 수컷 성질이 Y 염색체에 실려 있기 때문입니다. 분석 기관은 Y 염색체에만 있는 DNA 조각을 찾아 묘목 단계에서 수그루를 가려낼 수 있습니다(2장).

Monoecy1: X 염색체의 성 관련 영역 (2025년)

일부 품종은 *자웅동주(monoecious)*로, 한 개체가 보통 수꽃과 암꽃을 모두 만듭니다. 다른 품종은 자웅이주로, 수그루와 암그루가 따로 있습니다. 아일랜드 University College Dublin 연구팀은 프랑스 CNRS, Université Paris-Saclay와 함께 이 차이를 만드는 유전자를 찾았습니다. 이 연구(Toscani et al.)는 2025년 7월 프리프린트로 공개되었고 2026년 New Phytologist에 게재되었습니다(doi:10.1111/nph.71185).

연구팀은 QTL 매핑을 사용했습니다. 이 방법에서는 식물을 교배하고 자손의 형질을 기록한 뒤, 그 형질과 함께 유전되는 염색체 구간을 찾습니다. 연구팀은 찾아낸 영역에 Monoecy1이라는 이름을 붙였습니다.

X 염색체에 있으며, 성염색체 중 가장 오래되고 가장 많이 분화한 부분에 자리합니다.
약 60,000개의 DNA 염기 안에 후보 유전자 세 개가 있습니다. CsREM16, lncREM16, CsKAN4입니다.
CsREM16과 CsKAN4는 이미 알려진 전사인자 유전자들과 계통이 가깝습니다. 전사인자는 다른 유전자를 켜거나 끄는 역할을 합니다. lncREM16은 긴 비암호화 RNA 유전자로, RNA는 만들지만 단백질은 만들지 않습니다.
저자들은 이 세 유전자가 함께 작용해 암수 구분과 자웅동주·자웅이주 여부를 모두 조절한다고 제안합니다. 논문 제목에도 이 유전자들이 성별을 ‘잠재적으로(potentially)’ 조절한다고 적혀 있습니다. 그 역할은 아직 실험으로 증명되지 않았습니다.

정리하면 연구자들은 영역을 찾았지만, 어느 유전자가 원인인지는 아직 증명하지 못했습니다. 따라서 이 연구를 근거로 자웅동체가 나오지 않는다고 보장할 수 있는 씨앗은 없습니다. 어떤 유전 계통이 안정적인지 판단하려면 지금도 품종별로 직접 남긴 자웅동체 기록이 가장 좋은 기준입니다.

에틸렌과 CsETR1 수용체

에틸렌은 식물이 기체 형태로 내보내는 식물 호르몬입니다. 에틸렌 농도가 높으면 수꽃이 억제되어 식물이 암그루로 유지됩니다. CsETR1은 에틸렌 수용체를 만드는 유전자입니다. 에틸렌 수용체는 식물 세포가 에틸렌을 감지하게 해 주는 단백질입니다.

티오황산은(STS)은 이 수용체를 차단합니다. STS로 처리한 암그루(XX)는 수꽃을 만듭니다. 그 꽃가루에는 X 염색체만 들어 있으므로, 이 꽃가루로 맺힌 씨앗은 모두 암그루가 됩니다. 이런 씨앗을 페미나이즈드 시드 (암그루 전용 종자)라고 합니다. 이를 만드는 대표적인 두 방법은 4장에서 비교합니다.

2. 식물의 성별을 알아보는 방법

프리플라워 판별

프리플라워는 본격적으로 개화하기 전에 식물이 처음 만드는 작은 꽃입니다. 잎자루가 원줄기에 붙는 마디에 나타나며, 보통 영양생장 4–6주 차에 보입니다. 암그루의 프리플라워에는 암술 (피스틸)이 있는데, 가늘고 흰 털 한두 가닥처럼 보입니다. 수그루의 프리플라워는 짧은 자루 끝에 달린 작고 둥근 화분낭입니다.

눈으로 프리플라워를 판별하면 정확도는 약 85–90%입니다. 대략 열 번에 한 번은 틀릴 수 있다는 뜻입니다. 비용이 들지 않아 소규모 재배자에게 알맞습니다. 확대경(루페)을 쓰면 작은 기관이 훨씬 잘 보입니다.

역자 주: 태국 야외에서는 일 년 내내 낮 길이가 12시간 안팎으로 유지됩니다. 그래서 광주기 식물이 온대 국가 가이드에서 말하는 시기보다 일찍 개화를 시작할 수 있습니다. 태국 위도에서 광주기 식물이 일찍 개화하는 이유를 참고하세요. 일찍 나오는 프리플라워를 놓치지 않으려면 야외 재배 식물은 4–6주 차가 되기 전부터 마디를 확인하세요.

씨앗 단계부터 12시간 광주기로 개화시키기

이 방법에서는 묘목에 첫날부터 빛 12시간, 어둠 12시간을 줍니다(‘씨앗부터 12/12’). 이렇게 하면 개화가 일찍 시작되어 약 10–14일째에 성별이 드러납니다. 정확도는 약 95%입니다. 돈은 들지 않지만 식물에 스트레스를 주고 수확량이 줄어듭니다. 많은 개체를 선별해야 하는 재배자에게 알맞습니다.

실험실 DNA 검사: 가장 정확한 방법

PCR(중합효소 연쇄 반응)은 짧은 DNA 조각을 검출할 수 있을 만큼 여러 번 복제하는 실험실 기법입니다. 성별을 판별할 때는 SCAR 마커나 MADC2 마커처럼 Y 염색체에 있는 수컷 마커를 찾습니다. SCAR(sequence-characterized amplified region, 서열 특성화 증폭 영역)는 DNA 마커의 한 종류입니다. 마커가 검출되면 그 개체는 수그루입니다.

정확도: MADC2 마커를 qPCR로 검사했을 때 98.5% 이상이며, 잎 시료 약 8,200개로 확인했습니다(Torres et al., 2022).
시기: 5–7일째, 자엽 (떡잎) 단계부터 가능합니다. 묘목에 처음 나온 둥근 떡잎만 있는 단계입니다.
비용: 시료당 5–15 USD.
적합한 대상: 상업 재배자와 육종가.

	프리플라워 확인	씨앗부터 12/12	실험실 DNA 검사(PCR)
정확도	85–90%	약 95%	98.5% 이상
성별을 알 수 있는 시기	영양생장 4–6주 차	10–14일째	5–7일째
개체당 비용	무료	무료(단, 수확량 손실)	5–15 USD
적합한 대상	소규모 재배자	많은 개체 선별	상업 재배자와 육종가

역자 주: 태국에서 어느 분석 기관이 PCR로 대마 성별 검사를 하는지, 가격이 얼마인지는 확인하지 못했습니다. 시료당 가격, 필요한 시료 종류, 결과가 나오기까지 걸리는 시간을 기관에 직접 물어보세요. 기관마다 규정이 다르므로 시료를 채취하기 전에 채취·보관·발송 방법을 확인하세요. 모든 묘목에 번호를 붙이고, 시료에도 같은 번호를 적으세요. 그래야 검사 결과를 해당 개체와 정확히 맞출 수 있습니다. 분석 기관에 관해서는 B2B 서비스: 분석 기관, 물류 및 위탁 작업에서 다른 재배자에게 물어볼 수 있습니다.

역자 주: 실험실 검사가 현실적으로 어렵다면 수그루를 피하는 방법이 두 가지 더 있습니다. 직접 검증한 판매자에게서 페미나이즈드 시드를 사는 방법이 있습니다. 이미 가지고 있는 암그루에서 삽수를 받아 뿌리를 내리는 방법도 있습니다(모주 관리와 클론 만들기). 다른 농장에서 산 클론은 조심하세요. 해충이나 홉 잠재 바이로이드(HLVd)가 함께 들어오거나, 엉뚱한 품종일 수 있습니다.

3. 자웅동체와 나너(nanner)

자웅동체는 보통 수꽃도 함께 피우는 암그루처럼 보입니다. 이 수꽃은 수그루처럼 마디에 생긴 완전한 화분낭일 수 있습니다. ‘나너’(바나나(bananas)를 줄인 말)일 수도 있습니다. 나너는 버드에서 곧게 튀어나오는 작은 노란색 또는 연녹색의 수꽃 기관입니다. 나너도 화분낭처럼 같은 개체와 주변 개체에 꽃가루를 날릴 수 있습니다.

유전적 자웅동체

원문은 유전적 자웅동체가 Mo1 대립 유전자(유전자 변이형)의 돌연변이나 불안정한 유전 계통 때문에 생긴다고 설명합니다. 상업 품종 세 가지를 조사한 한 연구에서는 조사한 개체의 5–10%에서 자웅동체 꽃이 나타났습니다(Punja & Holmes, 2020). 이 형질은 다음 세대로 전해집니다. 이런 개체는 즉시 제거하고, 모주나 육종용으로 절대 쓰지 마세요.

1장에서 보았듯이 Monoecy1의 원인 유전자는 아직 실험으로 확인되지 않았습니다. 'Mo1’이라는 이름을 쓰거나 그 변이형을 약물형(drug-type) 대마의 자웅동체와 연결한 연구는 찾지 못했습니다. '돌연변이 Mo1 대립 유전자’는 증명된 원인이 아니라 작업 가설로 받아들이세요.

스트레스성 자웅동체: 다섯 가지 원인

소등 시간(암기) 중 빛 샘. 가장 큰 원인입니다.
개화기에 오래 이어지는 30 °C 이상의 온도.
심각한 칼륨(K) 결핍.
너무 늦은 수확. 너무 오래 둔 버드에는 나너가 자라기 시작합니다.
근역(뿌리 영역)의 ±1.0을 넘는 pH 변동.

호르몬이 꽃의 성별을 바꾸는 방식

어떤 꽃을 피울지는 호르몬이 조절합니다. 옥신(생장 호르몬의 하나)이 높으면 암꽃이, 지베렐린(또 다른 생장 호르몬)이 높으면 수꽃이 잘 생깁니다. 에틸렌은 ‘암컷 호르몬’ 역할을 합니다. 식물이 스트레스를 받으면 에틸렌이 줄고 지베렐린이 늘어나 수꽃이 나타납니다.

원문은 이것을 생존 기제로 설명합니다. 스트레스를 받은 식물은 자기 꽃가루를 만들어서라도 씨앗을 맺으려 합니다. 위의 다섯 가지 원인이 모두 결국 스트레스인 이유가 여기에 있습니다. 스트레스를 없애면 자웅동체를 일으키는 요인도 대부분 사라집니다.

역자 주: 태국과 동남아시아에서 이 원인들이 어떻게 나타나는지, 각각 어떻게 대처할지 정리했습니다.

야외와 온실의 야간 불빛. 가로등, 방범등, 이웃집 불빛이 개화 중인 식물에 닿을 수 있습니다. 이런 불빛을 가리거나 다른 장소에서 재배하세요. 차광 온실의 암막이 찢어지면 빛이 들어오므로 폭풍이 지나갈 때마다 덮개를 점검하세요.
정전. 기계식 타이머는 정전 중에 멈췄다가 그만큼 늦게 돌아갑니다. 그러면 식물의 밤 시간에 조명이 켜질 수 있습니다. 정전이 있을 때마다 타이머 시계를 확인하세요. 폭풍이 잦은 우기에는 특히 중요합니다. 배터리 백업이 있는 디지털 타이머는 정확한 시간을 유지합니다.
더위. 바깥이 30–35 °C일 때 실내를 20–26 °C로 유지하려면 환경 제어(냉방·환기)를 미리 계획해야 합니다. 냉방 용량은 실제 열부하에 맞춰 정하세요(태국 개화실의 에어컨·제습기 용량 산정). 바깥이 더 시원한 밤에 조명을 켜면 에어컨 부담이 줄어듭니다. 최저/최고 온도계를 두면 자리를 비운 사이 정전이 났을 때 실내가 얼마나 더워졌는지 알 수 있습니다.
유전 계통. 실내를 30 °C 아래로 유지할 수 없다면 더위 속에서 좋은 결과를 보인 유전 계통을 고르세요(30 °C를 넘는 재배실용 유전 계통 선택).

자웅동체 선별, 그리고 발견했을 때 할 일

개화 첫 2주 동안 모든 개체를 매일 확인하세요. 수확이 늦어지면 나너가 생기므로 수확 전 마지막 몇 주에도 버드를 다시 확인하세요.
수꽃이 달린 개체를 옮기기 전에 비닐봉지를 씌우세요. 꽃가루가 털려 다른 개체에 떨어지는 것을 막을 수 있습니다.
자웅동체가 나올 때마다 날짜, 품종, 실내 조건(온도, 조명 일정, 정전 여부)을 적으세요. 이 기록으로 어떤 유형의 자웅동체인지 알 수 있습니다. 같은 방, 같은 품종에서 한 개체만 자웅동체가 되고 나머지는 멀쩡하다면 유전이 원인일 가능성이 큽니다. 정전이나 폭염 뒤에 여러 품종에서 많은 개체가 자웅동체가 되었다면 스트레스 요인부터 바로잡으세요.
일부 육종가는 모주로 남기기 전에 어떤 개체가 자웅동체가 되는지 보려고 일부러 스트레스를 줍니다. 원문에는 이 방법이 나오지 않고, 공개된 검증 프로토콜도 찾지 못했습니다. 여러 사이클에 걸쳐 직접 남긴 기록에 의존하세요.

4. 페미나이즈드 시드 만들기: 티오황산은 또는 콜로이드 은

두 방법 모두 은으로 암그루의 에틸렌 수용체를 차단해 꽃가루를 만들게 합니다(1장). 콜로이드 은은 아주 미세한 은 입자를 물에 분산시킨 것입니다.

티오황산은(STS)

암그루화율: 99.7–99.9%.
5–7일 간격으로 2–3회 분무합니다.
분무한 식물은 절대 섭취하지 마세요.

콜로이드 은

암그루화율: 95–99%.
14–21일 동안 매일 분무합니다.
집에서 쉽게 만들 수 있습니다.

	STS	콜로이드 은
암그루화율	99.7–99.9%	95–99%
분무	2–3회	14–21일 동안 매일
적합한 대상	전문 육종가	가정 재배자

1장에 링크한 STS 포럼 토픽에서 두 방법을 단계별로 설명합니다.

역자 주: 사용하는 모든 화학물질의 물질안전보건자료(SDS)를 읽으세요. 용액을 섞고 분무할 때는 장갑, 보안경, 마스크를 착용하세요. 처리할 식물은 별도의 공간에서 분무하세요. 분무액이 개화 중인 작물로 날아가면 그 작물도 꽃가루를 만들 수 있습니다. 처리한 식물의 꽃은 절대 섭취하거나 판매하거나 제공하지 마세요. 남은 용액은 하수구나 수로에 버리지 말고, 폐기 방법을 공급업체에 물어보세요.

역자 주: STS는 질산은과 티오황산나트륨으로 만듭니다. 이 물질들의 구매·보관·사용에 태국의 어떤 규정이 적용되는지 공급업체에 물어보세요. 공급처를 찾으려면 태국의 공식 실험실 화학약품 유통업체에 문의하거나 브리더스 랩(Breeders Lab)에서 다른 재배자에게 물어보세요. 처음에는 암그루 한 그루나 가지 하나로 시작하세요. 그래야 배치 전체를 걸기 전에 방법을 익힐 수 있습니다.

5. 규모에 맞는 성별 관리

규모	종자 유형	성별 확인 방법	참고
개인(1–10그루)	페미나이즈드 시드	프리플라워 확인	개화 첫 주에 매일 점검
중규모(10–50그루)	페미나이즈드 시드 + 레귤러 시드 (일반 종자)	실험실 DNA 검사 + 프리플라워 확인	레귤러 시드에는 실험실 검사 사용
상업(50그루 이상)	페미나이즈드 시드(STS로 생산)	실험실 DNA 검사 필수	수그루 한 그루 때문에 작물 전체를 잃을 수 있음
육종	레귤러 시드	실험실 DNA 검사 + 표현형(눈에 보이는 형질)	야외에서는 수그루를 개화 중인 암그루와 멀리 떨어뜨려 둘 것

역자 주: 야외에서 수그루를 얼마나 떨어뜨려야 안전한지에 대해 합의된 기준은 없습니다. 헴프 종자 인증 규정에서 정한 격리 거리는 국가와 종자 등급에 따라 몇 미터부터 1,500 m 이상까지 다양합니다. 꽃가루는 바람을 타고 이동하므로 인근 농장의 수그루도 내 작물을 수분시킬 수 있습니다. 실내에서는 공기 흐름이 분리된 별도의 방에 수그루를 두세요. 수그루 방에서 개화실로 들어갈 때는 옷을 갈아입으세요.

자웅동체 예방 체크리스트

✓ 매 사이클 전에 빛 샘 점검. 조명을 끄고 문을 닫은 방 안에 몇 분 서서 빛이 새어 들어오는 지점을 찾으세요. 빛 샘은 스트레스성 자웅동체의 주원인이므로 찾은 곳은 모두 막으세요.
✓ 개화 온도는 20–26 °C, 최대 28 °C. 그래야 30 °C 스트레스 구간과 충분한 거리를 둘 수 있습니다.
✓ pH는 수경재배에서 ±0.3, 흙에서 ±0.5 이내로 안정 유지. 자웅동체를 일으키는 ±1.0 변동보다 훨씬 좁은 범위입니다.
✓ 제때 수확. 너무 오래 둔 버드에는 나너가 자랍니다.
✓ 안정적인 유전 계통 선택. 안정된 계통일수록 유전적 자웅동체가 적게 나옵니다.
✓ 개화 첫 2주 동안 매일 점검. 수꽃이 열리기 전에 찾아낼 수 있습니다. 위 표의 '첫 주 매일 점검’을 2주로 늘린 것입니다.

6. 주목할 연구, 2024–2026년

CRISPR-Cas9으로 Monoecy1 유전자를 편집해 자웅동체가 되지 않는 품종 만들기. CRISPR-Cas9은 원하는 위치에서 DNA를 자르는 유전자 편집 도구입니다. 재배자가 기대할 수 있는 결과는 자웅동체가 되지 않는 유전 계통입니다. 하지만 1장에서 보았듯이 핵심 유전자가 아직 확인되지 않았으므로 지금은 연구 방향일 뿐입니다. 대마에서 이 유전자들을 편집한 연구가 발표된 사례도 찾지 못했습니다. 아직 구매할 수 있는 것은 없습니다. 당분간은 계속 안정적인 유전 계통을 고르세요.
'자웅동체 가능성’을 예측하는 후성유전 마커. 후성유전 표지는 DNA에 붙는 화학적 꼬리표로, DNA 서열은 그대로 두고 유전자가 쓰이는 방식을 바꿉니다. 이를 이용한 검사가 있다면 시간을 들이기 전에 자웅동체가 되기 쉬운 개체를 골라낼 수 있습니다. 판매 중인 검사는 찾지 못했으며, DNA 메틸화와 자웅동체에 관한 연구는 아직 초기 단계입니다. 이런 검사가 나오면 직접 남긴 자웅동체 기록으로 그 검사가 믿을 만한지 판단할 수 있습니다.
현장 DNA 검사(LAMP 분석법): 약 30분 만에 결과, 최소한의 장비. LAMP(loop-mediated isothermal amplification, 고리 매개 등온 증폭)는 하나의 일정한 온도에서 DNA를 복제하므로 대형 실험실 장비가 필요 없습니다. 한 연구에서 수컷 마커를 찾는 LAMP 검사는 65 °C에서 30분 만에 결과를 보였습니다. 다만 적은 수의 시료로만 시험했기 때문에 추가 검증이 필요합니다(Torres et al., 2022). 태국에서 대마 LAMP 성별 검사가 제공되는지는 확인하지 못했습니다. 먼저 이용하는 분석 기관에 문의해 보세요. 이 검사에 의존하기 전에 작은 배치로 표준 실험실 검사와 결과를 비교해 보세요.
사진에서 프리플라워를 찾아내는 인공지능. 정확도를 제시한 연구가 발표된 사례는 찾지 못했습니다. 참고 의견으로만 쓰고, 성별은 눈이나 검사로 확인하세요.

태국 법률 안내

이 글은 교육과 과학 목적으로만 작성되었습니다. 대마 꽃(ช่อดอกกัญชา)은 보건부 고시 「규제 허브(대마)」 불기 2568년에 따른 규제 허브입니다. 이 고시는 태국 전통의학 보호법 불기 2542년(1999년)에 근거해 발령되었으며, 2025년 6월 26일부터 시행되고 있습니다. 꽃은 PT 33(ภ.ท. 33) 처방전이 있을 때만, 최대 30일분까지 판매할 수 있습니다. 꽃의 광고와 온라인 판매는 금지되어 있습니다.

2026년에는 불기 2569년 부령 두 건이 뒤이어 나왔습니다. 규제 허브에 관한 부령 (제2호) 불기 2569년은 2026년 4월 30일에 시행되었으며, 대마 꽃의 허가 기준을 강화했습니다. 대마 또는 헴프 추출물에 관한 부령 불기 2569년은 2026년 4월 26일에 시행되었습니다.

대마 꽃을 상업적으로 판매·가공·수출하려면 허가가 필요합니다. PT 33은 꽃을 조제·교부할 때 쓰는 처방전 양식이며, 재배 허가가 아닙니다. 1999년 법 제78조에 따라 허가 없이 규제 허브를 판매하거나 가공하면 1년 이하의 징역 또는 20,000바트 이하의 벌금에 처하거나 이를 병과할 수 있습니다. 기호용 꽃 판매는 허용되지 않습니다.

사례를 공유해 주세요

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참고 문헌

Prentout, D. et al. (2020). An efficient RNA-seq-based segregation analysis identifies the sex chromosomes of Cannabis sativa. Genome Research, 30(2), 164–172. doi:10.1101/gr.251207.119
Prentout, D. et al. (2021). Plant genera Cannabis and Humulus share the same pair of well-differentiated sex chromosomes. New Phytologist, 231(4), 1599–1611.
Toth, J.A. et al. (2020). Development and validation of genetic markers for sex and cannabinoid chemotype in Cannabis sativa L. GCB Bioenergy, 12(3), 213–222. doi:10.1111/gcbb.12667
Mohan Ram, H.Y. & Sett, R. (1982). Induction of fertile male flowers in genetically female Cannabis sativa plants by silver nitrate and silver thiosulphate anionic complex. Theoretical and Applied Genetics, 62, 369–375. doi:10.1007/BF00275107
Divashuk, M.G. et al. (2014). Molecular cytogenetic characterization of the dioecious Cannabis sativa with an XY chromosome sex determination system. PLoS ONE, 9(1), e85118.
Mandolino, G. et al. (1999). Identification of DNA markers linked to the male sex in dioecious hemp (Cannabis sativa L.). Theoretical and Applied Genetics, 98, 86–92. doi:10.1007/s001220051043
Toscani, M., Malik, A., Riera-Begue, A., Dowling, C., Rougemont, Q., Rodríguez de la Vega, R.C., Giraud, T., Schilling, S. & Melzer, R. (2026). Three closely linked X-chromosomal genes potentially control sex determination in Cannabis sativa. New Phytologist. doi:10.1111/nph.71185 (2025년 7월 프리프린트).
Feder, C.L. et al. (2021). Fertilization following pollination predominantly decreases phytocannabinoids accumulation and alters the accumulation of terpenoids in Cannabis inflorescences. Frontiers in Plant Science, 12, 753847. doi:10.3389/fpls.2021.753847
Torres, A. et al. (2022). High-throughput methods to identify male Cannabis sativa using various genotyping methods. Journal of Cannabis Research, 4, 57.
Punja, Z.K. & Holmes, J.E. (2020). Hermaphroditism in marijuana (Cannabis sativa L.) inflorescences – impact on floral morphology, seed formation, progeny sex ratios, and genetic variation. Frontiers in Plant Science, 11, 718. doi:10.3389/fpls.2020.00718