pH und EC sind die zwei grundlegendsten Parameter beim Cannabis-Anbau â und dennoch die hĂ€ufigste Problemursache fĂŒr AnfĂ€nger. Laut Statistiken der Anbau-Community werden ĂŒber 70 % der âNĂ€hrstoffmangelâ-Probleme tatsĂ€chlich durch einen falschen pH-Wert verursacht, der verhindert, dass Pflanzen NĂ€hrstoffe aufnehmen, selbst wenn sie in voller Menge zugegeben wurden. Dieser Artikel hilft Ihnen zu verstehen, was pH ist, was EC/TDS misst, wie man richtig misst und anpasst und wie man die hĂ€ufigsten Fehler vermeidet.
1. Was ist der pH-Wert?
Der pH-Wert (Potentia Hydrogenii) ist eine Skala, die misst, wie sauer oder alkalisch eine Lösung ist. Sie reicht von 0 (stÀrkste SÀure) bis 14 (stÀrkste Base), wobei 7.0 neutral ist.
Haupteigenschaften:
- Logarithmische Skala: Jede Ănderung um eine pH-Einheit = 10-fache Ănderung der Hâș-Konzentration. Zum Beispiel: pH 5.0 ist 10-mal saurer als pH 6.0 und 100-mal saurer als pH 7.0.
- Auswirkung auf Wurzeln: Cannabis-Wurzeln nehmen NÀhrstoffe durch Ionenaustausch (Kationen-/Anionenaustausch) auf. Ein zu hoher oder zu niedriger pH-Wert verÀndert die Ladung der WurzeloberflÀche und die Form der NÀhrstoffelemente, was verhindert, dass sie die Wurzelzellmembranen passieren.
- NÀhrstoffblockade-Mechanismus: Bei einem niedrigen pH-Wert (< 5.5) fÀllt Phosphor mit Eisen und Aluminium aus und wird unlöslich. Bei einem hohen pH-Wert (> 7.5) fÀllt Phosphor mit Kalzium aus. Ein MikronÀhrstoff / Spurenelement wie Fe, Zn oder Mn löst sich bei einem niedrigen pH-Wert gut auf, wird aber toxisch, wenn es zu sauer ist.
Untersuchungen von Veazie et al. (2025) in Agrosystems, Geosciences & Environment zeigten: Cannabis erreicht das beste Wachstum bei einem Substrat-pH-Wert von 6.5. Unter pH 5.0 ist das Wachstum aufgrund von Eisen- und MangantoxizitÀt deutlich gehemmt.
2. Optimaler pH-Wert nach Substrat
Der optimale pH-Wert variiert je nach Substrat-Typ aufgrund von Unterschieden in der PufferkapazitÀt und der KAK (KationenaustauschkapazitÀt):
| Medium | Optimaler pH | Pufferung | Eigenschaften |
|---|---|---|---|
| Erde | 6.0 â 7.0 | Hoch | Hohe KAK, bindet NĂ€hrstoffe an BodenpartikeloberflĂ€chen. Stabiler pH, muss selten oft angepasst werden. Zielwert 6.3â6.8. |
| Kokossubstrat | 5.8 â 6.3 | Mittel | KAK 10â30 meq/100g. Frisches Kokos enthĂ€lt ĂŒberschĂŒssiges Naâș/Kâș, muss vor Gebrauch mit Cal-Mag (Kalzium-Magnesium) gepuffert werden. pH Ă€ndert sich schneller als bei Erde. |
| Hydroponik | 5.5 â 6.5 | Keine | Wurzeln haben direkten Kontakt zur Lösung. Kein Substratpuffer, pH Ă€ndert sich schnell. TĂ€glich prĂŒfen. Idealbereich: 5.8â6.0. |
| Steinwolle | 5.5 â 6.5 | Keine | NatĂŒrlicher pH ~7.0, muss vor Gebrauch in einer Lösung mit pH 4.5â5.0 eingeweicht werden. Null Pufferung â behandeln wie Hydroponik. |
| lebendige Erde | 6.2 â 7.0 | Sehr hoch | Humus und Mikroorganismen regulieren den pH selbst. Mykorrhizapilze helfen bei der NĂ€hrstoffaufnahme. Meist keine pH-Anpassung des Wassers nötig. Dolomitkalk als natĂŒrlicher Puffer. |
| Torf | 5.7 â 6.1 | Hoch | NatĂŒrlicher pH 3.0â4.0, muss mit Kalk gemischt werden (ca. 0,6-1,2 kg/mÂł). Gute Pufferung, nimmt aber mit der Zeit ab. |
Profi-Tipp: Anstatt einen festen pH-Wert beizubehalten, verwenden viele erfahrene Grower eine âpH-Oszillationsâ-Strategie â sie wechseln bei der BewĂ€sserung zwischen pH 5.8 und 6.3 (fĂŒr Kokossubstrat/Hydroponik) oder 6.0 und 6.5 (fĂŒr Erde). Dies stellt sicher, dass alle NĂ€hrstofftypen irgendwann im BewĂ€sserungszyklus die Möglichkeit zur optimalen Aufnahme haben.
3. Tabelle zur NĂ€hrstoffverfĂŒgbarkeit nach pH-Wert
3.1 MakronÀhrstoffe
| NĂ€hrstoff | Symbol | Optimaler pH-Bereich | NĂ€hrstoffblockade bei | Anmerkungen |
|---|---|---|---|---|
| Stickstoff | N | 6.0 â 8.0 | < 5.5 | Breite VerfĂŒgbarkeit. NOââ»-Form erhöht den pH der Wurzelzone / RhizosphĂ€re, NHââș senkt ihn. |
| Phosphor | P | 6.0 â 7.0 | < 5.5 oder > 7.5 | Sehr pH-empfindlich. FĂ€llt mit Fe/Al (sauer) oder Ca (alkalisch) aus. Am hĂ€ufigsten blockiertes Element. |
| Kalium | K | 5.5 â 8.0 | < 5.0 | Breite VerfĂŒgbarkeit, minimal vom pH beeinflusst. Konkurriert mit Ca und Mg um die Aufnahme. |
| Kalzium | Ca | 6.2 â 7.5 | < 5.0 | VerfĂŒgbarkeit steigt mit dem pH. Komplett blockiert in Hydroponik unter pH 5.0. |
| Magnesium | Mg | 6.0 â 7.5 | < 5.5 | VerfĂŒgbarkeit steigt mit dem pH. HĂ€ufig im Mangel bei Kokossubstrat, da KAK Mg absorbiert. |
| Schwefel | S | 5.5 â 8.0 | Selten blockiert | Breite VerfĂŒgbarkeit bei den meisten pH-Werten. Selten problematisch. |
3.2 MikronÀhrstoffe / Spurenelemente
| NÀhrstoff | Symbol | Optimaler pH-Bereich | NÀhrstoffblockade/ToxizitÀt bei | Anmerkungen |
|---|---|---|---|---|
| Eisen | Fe | 5.0 â 6.5 | Toxisch < 5.0; Blockade > 7.0 | Löst sich gut bei niedrigem pH. ToxizitĂ€t (BronzefĂ€rbung der BlĂ€tter) bei pH < 5.0 (Veazie et al., 2021). |
| Mangan | Mn | 5.0 â 6.5 | Toxisch < 5.0; Blockade > 7.0 | Ăhnlich wie Fe â toxisch bei niedrigem pH. Mn-ToxizitĂ€tssymptome Ă€hneln einem Mg-Mangel. |
| Zink | Zn | 5.0 â 6.5 | Blockade > 7.0 | ĂberschĂŒssiges P konkurriert um Aufnahme. Zn-Mangel verursacht kleine, verdrehte neue BlĂ€tter. |
| Kupfer | Cu | 5.0 â 6.5 | Blockade > 7.0 | Wird in sehr kleinen Mengen benötigt (0.1â0.18 ppm). Löst sich gut bei niedrigem pH. |
| Bor | B | 5.0 â 7.0 | Toxisch > 1.0 ppm | Relativ breite VerfĂŒgbarkeit. Empfohlene Dosis: 0.875â1.0 ppm. |
| MolybdĂ€n | Mo | 6.0 â 8.0 | Blockade < 5.5 | AUSNAHME: VerfĂŒgbarkeit STEIGT mit dem pH (im Gegensatz zu anderen Mikros). Benötigt fĂŒr NOââ»-Umwandlung. |
Grundregel: MakronĂ€hrstoffe (N, P, K, Ca, Mg) sind bei pH 6.0â7.0 am besten verfĂŒgbar. MikronĂ€hrstoffe / Spurenelemente (Fe, Mn, Zn, Cu) sind bei pH 5.0â6.5 am besten. MolybdĂ€n ist die einzige Ausnahme. Deshalb gilt der âSweet Spotâ von 5.8â6.5 als optimale Ăberschneidungszone fĂŒr Kokossubstrat/Hydroponik.
4. EC & TDS â Messung der NĂ€hrstoffkonzentration
EC (elektrische LeitfÀhigkeit) misst die FÀhigkeit einer NÀhrlösung, Strom zu leiten, was die gesamten gelösten Mineralsalze widerspiegelt. Einheit: mS/cm.
TDS (gesamtgelöste Feststoffe) ist ein aus dem EC-Wert umgerechneter Wert. Hinweis: TDS ist keine direkte Messung â TDS-MessgerĂ€te messen eigentlich EC und multiplizieren ihn dann mit einem Umrechnungsfaktor.
4.1 EC â TDS Umrechnung
| Skala | Formel | MessgerÀte-Marken | Beispiel (EC 2.0) |
|---|---|---|---|
| ppm 500 (NaCl) | PPM = EC Ă 500 | Hanna, Milwaukee | 1000 ppm |
| ppm 700 (Truncheon) | PPM = EC Ă 700 | Bluelab, Eutech | 1400 ppm |
WICHTIG: Dieselbe Lösung, gemessen mit zwei verschiedenen TDS-MessgerĂ€ten von unterschiedlichen Marken, kann um 40 % abweichen! Verwenden Sie daher immer EC (mS/cm) als primĂ€re Einheit â es ist eine tatsĂ€chliche physikalische Messung, die bei allen GerĂ€ten konsistent ist.
5. Optimaler EC-Wert nach Wachstumsphase
| Phase | EC (mS/cm) | PPM (500) | Anmerkungen |
|---|---|---|---|
| SĂ€mling / Klon / Steckling | 0.2 â 0.8 | 100 â 400 | Schwache Wurzeln, verbrennen leicht. Nur Feuchtigkeit + Licht. Einfaches Wasser mit angepasstem pH-Wert reicht fĂŒr die erste Woche. |
| FrĂŒhe vegetative Phase (Woche 1â3) | 0.8 â 1.2 | 400 â 600 | AllmĂ€hlich steigern. N fĂŒr Blatt- und StĂ€ngelentwicklung priorisieren. |
| SpĂ€te vegetative Phase (Woche 4+) | 1.2 â 1.6 | 600 â 800 | Pflanze ist stark. Auf Maximum erhöhen, wenn die Pflanze gut reagiert (keine Spitzenverbrennung). |
| FrĂŒhe BlĂŒtephase (Woche 1â3) | 1.4 â 1.8 | 700 â 900 | Auf BlĂŒtendĂŒnger umstellen. P-K erhöhen, N reduzieren. Stretch (BlĂŒtestreckung) findet statt. |
| Mittlere BlĂŒtephase (Woche 4â6) | 1.6 â 2.2 | 800 â 1100 | Höchster NĂ€hrstoffbedarf. CannabisblĂŒten entwickeln sich am aktivsten. Auf Spitzenverbrennung achten. |
| SpĂ€te BlĂŒtephase (Woche 7+) | 1.2 â 1.6 | 600 â 800 | AllmĂ€hlich reduzieren. Pflanze beginnt zu reifen, Bedarf sinkt. N fĂŒr natĂŒrlichen Farbwechsel reduzieren. |
| SpĂŒlung (letzte 1â2 Wochen) | 0.0 â 0.4 | 0 â 200 | Einfaches Wasser mit angepasstem pH oder sehr niedriger EC. Zweck: ĂberschĂŒssige Salze aus dem Substrat spĂŒlen, Geschmack verbessern. |
Anmerkung zur Strain (Sorte): Einige genĂŒgsame Sorten wie Autoflower oder Landrasse-Sativa vertragen zu Spitzenzeiten nur einen EC von 1.0â1.4. Starkzehrer wie OG Kush oder Gorilla Glue vertragen EC 2.5â3.0. Fangen Sie immer niedrig an, erhöhen Sie jeweils um 0.2 EC, beobachten Sie 2â3 Tage, bevor Sie weiter erhöhen.
6. GerÀte zur Messung von pH und EC
6.1 pH-Stift/MessgerÀt
- Apera PH20: Automatische Temperaturkompensation (ATC); eine beliebte Wahl fĂŒr AnfĂ€nger.
- Bluelab pH Pen: Langlebig, mit einer austauschbaren Sonde.
- Hanna HI98107: Einfacher Taschen-Tester; erfordert eine hÀufigere Kalibrierung.
6.2 EC/TDS-MessgerÀt
- Bluelab Truncheon: zeigt EC, ppm 500 und ppm 700 an; langlebig und wasserdicht. Wie bei jedem EC-MessgerĂ€t sollten Sie es von Zeit zu Zeit mit einer 1,413 mS/cm Standardlösung ĂŒberprĂŒfen.
- Hanna HI98312: EC/TDS-MessgerÀt mit ATC.
- TDS-3 (generisch): einfaches TestgerĂ€t fĂŒr den einfachen Gebrauch. ĂberprĂŒfen Sie, welche Skala (500 oder 700) es verwendet, bevor Sie sich darauf verlassen.
6.3 Kalibrierung
- pH-MessgerÀt: Wöchentlich mit pH 4.0, 7.0 (und optional 10.0) Standardlösungen kalibrieren.
- EC-MessgerĂ€t: Mit EC 1,413 mS/cm Standardlösung kalibrieren. Die meisten EC-Stifte mĂŒssen nur monatlich kalibriert werden.
- Lagerung der pH-Sonde: Halten Sie die pH-Sonde IMMER in Aufbewahrungslösung (KCl) feucht. Lassen Sie die pH-Sonde niemals austrocknen â sie wird dadurch dauerhaft beschĂ€digt.
7. Wie man den pH-Wert sicher anpasst
7.1 pH-Senker-Produkte (pH Down)
| Produkt | Wirkstoff | Vorteile | Nachteile |
|---|---|---|---|
| GH pH Down, AN pH Down | PhosphorsĂ€ure (HâPOâ) | Industriestandard. Stabiler pH-Halt. FĂŒgt P hinzu (gut fĂŒr BlĂŒtephase). | ĂberschĂŒssiges P kann Zn/Fe blockieren. Ătzend. |
| ZitronensĂ€ure | ZitronensĂ€ure (CâHâOâ) | Sicher, gĂŒnstig, lebensmittelecht. Geeignet fĂŒr organische Erde. | pH-WERT HĂLT NICHT â Mikroben bauen Citrat ab, pH-Wert springt zurĂŒck. Nicht fĂŒr Hydroponik. |
| SalpetersĂ€ure | HNOâ | FĂŒgt NOââ» hinzu (gut fĂŒr vegetative Phase). Professionell. | Kontrollierte Substanz (Sprengstoff-VorlĂ€ufer). Sehr gefĂ€hrlich. Nur fĂŒr gewerblichen Gebrauch. |
| SchwefelsĂ€ure | HâSOâ | Am gĂŒnstigsten. Sulfat ist neutral fĂŒr Pflanzen. | Am gefĂ€hrlichsten. Nur in LebensmittelqualitĂ€t verwenden. FĂŒr Hobby-Grower nicht empfohlen. |
| Essig / Zitrone | EssigsĂ€ure / ZitronensĂ€ure | NatĂŒrlich, sicher, leicht verfĂŒgbar. | VorĂŒbergehender Effekt. pH springt in Stunden zurĂŒck. Nur fĂŒr organische Erde. |
7.2 pH-Heber-Produkte (pH Up)
| Produkt | Wirkstoff | Vorteile | Nachteile |
|---|---|---|---|
| GH pH Up, AN pH Up | Kaliumhydroxid (KOH) | Schnell, stark, prĂ€zise. Industriestandard. | Ătzend. Leicht ĂŒberzudosieren. PSA erforderlich. |
| Kaliumsilikat | KâSiOâ | Erhöht den pH + liefert Silizium (stĂ€rkt StĂ€ngel, SchĂ€dlingsresistenz). | Kann in konzentrierten Lösungen mit Ca ausfĂ€llen. Zuerst verdĂŒnnen. |
| Dolomitkalk | CaMg(COâ)â | NatĂŒrlicher Puffer auf ~7.0. FĂŒgt Ca + Mg hinzu. 1 EL/Gallone Erde. | Langsam (dauert Tage). Nur zum Vormischen in Erde. |
| Austernschalen | CaCOâ | Langsame Freisetzung, LangzeitstabilitĂ€t. Hervorragend fĂŒr lebendige Erde. | Zu langsam fĂŒr Hydroponik. Nur in Erde/organischen Substraten wirksam. |
| Holzasche | KâCOâ, CaCOâ | Sehr alkalisch. FĂŒgt K, Ca, Spurenelemente hinzu. | Leicht ĂŒberzudosieren. Sehr sparsam verwenden. Ungenau. |
7.3 Richtiges Verfahren zur pH-Anpassung
- Zuerst NĂ€hrstoffe mischen (DĂŒnger verĂ€ndern den pH-Wert)
- Messen Sie den pH-Wert der Lösung nach dem Einmischen der NÀhrstoffe
- pH Up oder pH Down hinzufĂŒgen â mit 1â2 ml/Gallone beginnen
- GrĂŒndlich umrĂŒhren, 10 Minuten warten, erneut messen
- Wiederholen, bis der Ziel-pH erreicht ist
- NIEMALS um mehr als 0.3 pH pro Anpassung verÀndern
8. Messung des Drainagewassers (Runoff)
Die Messung des Drainagewassers ist der einzige Weg, um zu wissen, was tatsÀchlich in der Wurzelzone / RhizosphÀre passiert.
8.1 Wie man den Runoff misst
- BewÀssern Sie die Pflanze normal mit pH-angepasster NÀhrlösung
- Stellen Sie eine Schale unter den Topf, um das Drainagewasser aufzufangen
- Fangen Sie den Runoff nach den ersten paar Sekunden auf (ĂŒberspringen Sie Restwasser der vorherigen BewĂ€sserung)
- Messen Sie SOFORT pH und EC des Drainagewassers
- Protokollieren Sie es in einem Tagebuch, um Trends zu verfolgen
8.2 Ergebnisse lesen â Delta-Analyse von Input vs. Runoff
| Situation | Bedeutung | MaĂnahme |
|---|---|---|
| Runoff EC < Input EC | Pflanze nimmt NĂ€hrstoffe gut auf. Normal und ideal. | Normalen DĂŒngeplan fortsetzen. |
| Runoff EC â Input EC | Pflanze nimmt nicht auf â möglicherweise pH-NĂ€hrstoffblockade oder Wurzelschaden. | Runoff-pH prĂŒfen. Wurzelgesundheit prĂŒfen. Reduzierung des EC in Betracht ziehen. |
| Runoff EC > Input EC (+0.5 mS/cm oder mehr) | Salzansammlung in der Wurzelzone / RhizosphĂ€re. GefĂ€hrlich! | Mit einfachem pH-angepasstem Wasser spĂŒlen (SpĂŒlung), bis der Runoff-EC den Zielwert erreicht. Dann mit 50 % StĂ€rke fortfahren. |
| Runoff pH viel niedriger als Input pH (>0.5) | Substrat wird sauer. Wurzeln könnten gestresst sein. | Input-pH um 0.2â0.3 erhöhen. Leichte SpĂŒlung. Auf lila/braune Wurzeln prĂŒfen. |
HĂ€ufigkeit: Kokossubstrat/Hydroponik: Bei jeder BewĂ€sserung Runoff messen. Erde: Mindestens alle 2â3 BewĂ€sserungen. Verfolgen Sie Trends ĂŒber 3â5 aufeinanderfolgende Messungen, bevor Sie gröĂere Anpassungen vornehmen.
9. 10 HĂ€ufige pH- & EC-Fehler
| # | Fehler | Folge | Lösung |
|---|---|---|---|
| 1 | pH-Wert nicht messen | Stille NĂ€hrstoffblockade â sieht nach Mangel aus, aber Zugabe weiterer NĂ€hrstoffe hilft nicht. | Kaufen Sie ein pH-MessgerĂ€t und messen Sie BEI JEDER BewĂ€sserung. |
| 2 | MessgerĂ€te nicht kalibrieren | Falsche Messwerte, falsche Anpassungen â Pflanzenschaden. | Kalibrieren Sie den pH-Stift wöchentlich mit 4.0 + 7.0 Lösungen. EC-Stift monatlich. |
| 3 | âpH hinterherjagenâ â Ăberanpassung | Zugabe von Up â Ăberschreiten â Zugabe von Down â Ăberschreiten â Wurzelstress. | Jeweils 1â2 ml hinzufĂŒgen. 10 Min. warten. Erneut messen. Max. 0.3 pH pro Anpassung. |
| 4 | Drainagewasser ignorieren | Salzansammlung staut sich still auf, bis die Wurzeln vergiftet sind. | RegelmĂ€Ăig pH + EC des Drainagewassers messen. Mit dem Input vergleichen. |
| 5 | Falschen pH-Wert fĂŒr das Medium verwenden | BewĂ€sserung von Erde mit pH 5.5 â NĂ€hrstoffblockade von Ca, Mg. BewĂ€sserung von Hydroponik mit pH 6.8 â NĂ€hrstoffblockade von Fe, Mn, Zn. | Erde: 6.0â7.0. Kokossubstrat: 5.8â6.3. Hydroponik: 5.5â6.5. |
| 6 | pH VOR dem Mischen der NĂ€hrstoffe anpassen | DĂŒnger verĂ€ndern den pH stark. Zuerst anpassen = doppelt anpassen = Verschwendung. | IMMER ZUERST NĂ€hrstoffe mischen, DANN DANACH den pH anpassen. |
| 7 | EC zu hoch fĂŒr SĂ€mlinge | Junge Wurzeln verbrennen (NĂ€hrstoffverbrennung). SĂ€mlinge wachsen langsam, Spitzen werden gelb. | SĂ€mlinge: EC 0.2â0.8. Wöchentlich um 0.2 EC erhöhen. |
| 8 | Neues Kokossubstrat nicht puffern | Frisches Kokos hat Naâș/Kâș an den KAK-Stellen â schwerer Ca/Mg-Mangel in der ersten Woche. | Kokos ĂŒber Nacht vor der Verwendung in Cal-Mag (Kalzium-Magnesium) (EC 1.5â2.0) einweichen. |
| 9 | pH-Sonde austrocknen lassen | Trockene Sonde = dauerhaft beschĂ€digt. Geld fĂŒr neuen Stift verschwendet. | Immer in KCl-Aufbewahrungslösung lagern. Niemals destilliertes Wasser verwenden. |
| 10 | Verwechslung der TDS-Skalen | Tabelle nach 500er Skala lesen, aber GerĂ€t verwendet 700 â 1.4-fache ĂberdĂŒngung â Verbrennung. | Wissen, welche Skala Ihr GerĂ€t verwendet. Am besten: EC (mS/cm) als Standard nutzen. |
10. Fallstudie: Diagnose der NĂ€hrstoffblockade â Behandlungsablauf
Wenn Pflanzen Symptome eines NĂ€hrstoffmangels zeigen (gelbe BlĂ€tter, braune Flecken, langsames Wachstum), beeilen Sie sich NICHT, mehr DĂŒnger hinzuzufĂŒgen. Folgen Sie diesem Ablaufplan:
Schritt 1: MessgerĂ€te prĂŒfen â Kalibriert? Wenn nicht â zuerst kalibrieren, erneut messen.
Schritt 2: Runoff messen â Mit einfachem, pH-angepasstem Wasser gieĂen, Drainagewasser (Runoff) auffangen, pH und EC messen.
Schritt 3: Runoff-pH analysieren â Im richtigen Bereich?
- Nein â pH-NĂ€hrstoffblockade. Mit korrekt pH-angepasstem Wasser spĂŒlen (SpĂŒlung), bis der Runoff-pH den Zielwert erreicht.
- Ja â weiter mit Schritt 4.
Schritt 4: Runoff-EC analysieren â Runoff-EC um > 0.5 mS/cm höher als Input?
- Ja â Salzansammlung. SpĂŒlen, bis der Runoff-EC den Zielwert erreicht. Mit 50 % EC fortfahren.
- Nein â weiter mit Schritt 5.
Schritt 5: Wurzeln prĂŒfen â WeiĂ/hellcremefarben = gesund. Braun/schleimig = WurzelfĂ€ule.
- Braune Wurzeln â Behandeln Sie mit HâOâ 3 % (3 ml/L) oder Hydroguard. Wassertemperatur prĂŒfen (< 22°C).
- WeiĂe Wurzeln â weiter mit Schritt 6.
Schritt 6: BestĂ€tigen des tatsĂ€chlichen NĂ€hrstoffmangels â ErwĂ€gen Sie nun, den spezifisch fehlenden NĂ€hrstoff zu ergĂ€nzen. Gleichen Sie die Blattsymptome mit NĂ€hrstofftabellen ab.
Statistik: Von 10 FĂ€llen mit âNĂ€hrstoffmangelâ â sind 7 eine pH-NĂ€hrstoffblockade (NĂ€hrstoffe vorhanden, aber nicht absorbiert), 2 sind eine Salzansammlung (zu viel fĂŒhrt zu ToxizitĂ€t) und nur 1 ist ein tatsĂ€chlicher Mangel.
Quellenangaben
- Veazie P et al. (2025). Impact of substrate pH and micronutrient fertility rates on Cannabis sativa. Agrosystems, Geosciences & Environment, 8(1), e70044. doi:10.1002/agg2.70044.
- Veazie P, Whipker BE et al. (2021). When Micronutrients Become Macro Problems. Cannabis Business Times (Cultivation Matters column).
- Rx Green Technologies. Identifying pH Levels in Cannabis (pH technical paper). Identifying pH Levels in Cannabis | Rx Green Technologies
- Advanced Nutrients (2017). Nutrient Lockout: What It Is and How To Prevent It! Nutrient Lockout: How to Prevent It - Advanced Nutrients
- Quesada Moya F / Pevgrow (2024). Marijuana also has its PH â Best PH for Cannabis (Soil & Hydro) Chart. Best PH for Cannabis [Soil & Hydro] Chart | Pevgrow Blog
- CocoForCannabis. How To Set EC Targets; Growing Cannabis in Coco Coir with High Frequency Fertigation. https://www.cocoforcannabis.com/ectargets/
- Science in Hydroponics (2020). A Guide to Different pH Down Options in Hydroponics.
- BVB Substrates (2021). Cannabis substrate and pH buffer. Cannabis substrate and pH buffer - BVB Substrates
- HortGrow Solutions. Coco Coir as a Medium-CEC Substrate: Balancing Precision and Buffering. Coco Coir as a Medium-CEC Substrate: Balancing Precision and Buffering | HortGrow Blog
- Advanced Nutrients (2025). How to Optimize Your Commercial Grow With Rockwool for Cannabis; Peat Moss for Cannabis: The Complete Guide to Maximizing Your Grow Medium. advancednutrients.com
- Modern Farms (2026). DWC Cannabis Setup Guide.
- The Cannigma (2026). Living Soil Cannabis: Why Top Cultivators Are Ditching Synthetic Nutrients. Living Soil Cannabis: Why Top Cultivators Are Ditching Synthetic Nutrients | The Cannigma
- MalĂk M, TlustoĆĄ P (2025). Soilless Growing Media for Cannabis Cultivation. Agriculture (MDPI), 15(18), 1955. doi:10.3390/agriculture15181955
- Blimburn Seeds (2024). Best EC and pH for Cannabis Nutrient Uptake.
- GrowDiaries (2024). EC and PPM in Cannabis + Common Nutrient Deficiencies from Incorrect pH.
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